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Caractérisation biochimique et applications potentielles des glucosidases et de la a-galactosidase du suc digestif de la larve de rhynchophorus palmarum (curculionidae)

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par Assoi Yapi Désiré Patrice YAPI
Université ABOBO-ADJAMà‰ Abidjan - Doctorat 2008
  

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3-2-2-beta-Glucosidases

En se basant sur la spécificité de substrat, les â-glucosidases des insectes peuvent être subdivisées en trois classes : les classes 1, 2 et 3 (Terra et Ferreira, 1994).

La classe 1 regroupe les glycosyl-â-glycosidases et les aryl-â-glycosidases. Ce sont des enzymes capables d'hydrolyser aisément le cellobiose, le p-nitrophényl-â-Dglucopyranoside, le p-nitrophényl-â-D-galactopyranoside, le p-nitrophényl-â-Dfucopyranoside et le lactose (Terra et Ferreira, 1994). Les meilleures enzymes décrites appartenant à la classe 1 sont les â-glucosidases de Erinnyis ello (Santos et Terra, 1985) et de Rhynchosciara americana (Ferreira et Terra, 1983). La â-glucosidase de l'intestin moyen de Erinnyis ello hydrolyse le â-D-glucoside, le â-D-galactoside et le â-D-fucoside avec le même site actif. Celle de l'intestin moyen de l'insecte Rhynchosciara americana, contrairement aux autres â-glucosidases de l'intestin moyen des autres insectes, est intégrée dans la partie hydrophobe de la membrane cellulaire (Ferreira et Terra, 1983). Les propriétés cinétiques et le mécanisme réactionnel de cette enzyme sont similaires à ceux de la â-glucosidase de Erinnyis ello.

La classe 2 est composée uniquement des glycosyl-â-glycosidases c'est-à-dire des enzymes qui hydrolysent avec efficacité seulement le cellobiose et le lactose. Les âglucosidases des insectes adultes Abracris flavolineata (Marana et al., 1995) et Sitophilus oryzae (Baker et Woo, 1992) appartiennent à cette classe d'enzymes. Celle de Abracris flavolineata possède une masse moléculaire de 82 kDa et un pH optimum d'hydrolyse de 5,5 qui sont différents de ceux des â-glucosidases de la classe 2 des insectes adultes de Locusta migratoria et de Sitophilus oryzae. En effet, les â-glucosidases de ces insectes ont un même pH optimum d'hydrolyse (5,5). Les masses moléculaires sont respectivement de 110 kDa et 170 kDa (Baker et Woo, 1992).

Les â-glucosidases de la classe 3 sont celles qui sont capables de dégrader fortement le p-nitrophényl-â-D-glucopyranoside et les substrats similaires. La plupart de ces enzymes sont aussi actives sur le p-nitrophényl-â-D-galactopyranoside. Ces enzymes sont appelées alkyl ou aryl-â-glycosidases. Les insectes Abracris flavolineata (Marana et al., 1994), Sitophilus oryzae (Baker et Woo, 1992), Thaumetopoea pityoampa (Pratriel-Sosa et al., 1987), Diatraea saccharalis et Calliphora erythrocephala (Evans, 1956) en contiennent. Trois â-

glycosidases appelées J3Gly1, J3Gly 2 et J3Gly 3 ont été isolées de l'intestin moyen de l'insecte Diatraea saccharalis. Ces trois enzymes ont à peu près les mêmes masses moléculaires (58 ; 61 et 61 kDa), points isoélectriques (7,5 ; 7,4 et 7,4) et pH optima d'hydrolyse (6,7 6,3 et 7,2). Ces enzymes sont plus spécifiques les J3-glucosides qu'aux J3-galactosides et hydrolysent plus la liaison â-(1-3)glucosidique que les liaisons J3-(1-4) et J3-(1-6)glucosidiques. Le rôle physiologique des J3Gly1 et J3Gly 3 est d'assurer la digestion des oligo et disaccharides provenant de la dégradation des hémicelluloses tandis que celui de la J3Gly 2 est de dégrader les glycolipides. Les glandes salivaires de l'ouvrier du termite Macrotermes mulleri contiennent une J3-glucosidase acide de masse moléculaire de 120 kDa. C'est une protéine homodimérique (Rouland, 1986 ; Rouland et al., 1988) qui est différente de celles du termite Macrotermes subhyalinus qui ont été largement étudiées par Kouamé et al. (2005b). En effet, ces J3-glycosidases n'hydrolysent pas les saccharides tels que le mélibiose, le saccharose, le lactose, le xylobiose, le mélizitose, le stachyose, le raffinose, la laminarine, l'arabinogalactane, la carboxyméthylcellulose, l'inuline, le lichenane et l'amidon. Cependant, elles dégradent fortement le p-nitrophényl-J3-D-glucopyranoside, le p-nitrophényl-J3-Dfucopyranoside, le cellobiose et les cellodextrines. Le rôle physiologique de ces deux enzymes est d'assurer la digestion des oligo et disaccharides provenant de la dégradation des hémicelluloses et des celluloses.

En se référant aux spécificités de substrats, les enzymes des classes 1 et 2 hydrolysent avec efficacité le cellobiose et d'autres disaccharides. Ce sont de "vrai" â-glucosidases (E.C 3.2.1.21). Elles peuvent encore être appelées cellobiases. Les cellobiases sont des enzymes qui assurent la dégradation du cellobiose issu de la dégradation de la cellulose chez quelques insectes ayant une cellulase. Chez les insectes, la cellobiase est probablement aussi l'enzyme responsable de la finition de la dégradation de l'hémicellulose ou de la partie glucidique des glycoprotéines. Cette assertion est beaucoup plus soutenue par le fait que les enzymes de la classe 3 libèrent préférentiellement les monosaccharides liés à l'aglycone hydrophobique. Il est donc possible que leur substrat naturel soit les glycolipides tels que les glycosylcéramides. Les â-glucosidases de la classe 3 des insectes sont donc des glycosylcéramidases (EC 3.2.1.62) encore appelées phlozine hydrolases (Leese et Semenza, 1973). Des âglucosidases d'insectes de la classe 1 ayant les mêmes caractéristiques cinétiques que celles des classes 2 et 3 ont été observées chez les insectes Abracris flavolineata (Marana et al., 1995) et Sitophilus oryzae (Baker et Woo, 1992).

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"Soit réservé sans ostentation pour éviter de t'attirer l'incompréhension haineuse des ignorants"   Pythagore