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FACULTE DES SCIENCES
Département de Biologie
B.P.190 Kinshasa XI
CROISSANCE VEGETATIVE ET DE CELLE DE
EVALUATION DE L'EFFET DE LA DENSITE
DU
Stylosanthes guianensis (Aubl.) Sw. SUR SA
Manihot esculanta Crantz VARIETE
RAV.
BUTOTO IMANI wa RUSAATI
Travail de fin de Cycle présenté en vue de
l'
obtention de Titre de Gradué en
Sciences.
Groupe : Biologie
Directeur : Professeur LUMANDE KASALI Joseph
Encadreur : C.T. BULAKALI
Annee Acctiemique
2009- 2010
BISIMWA Pacifique
EPIGRAPHE
« Peu importe que le chat soit noir ou gris
pourvu qu'il attrape la souris »
DENG XIAOPING
DEDICACE
A mon Père MUSHONIO BANYIMWIRE Wa RUSAATI, A ma
Mère MURATWA NGEZIRABONA,
A toute la descendance de MIHUHI BULEMBE.
Je dédie mes prémices que constitue ce
travail
BUTOTO IMANI wa RUSAATI
AVANT-PROPOS
Au terme de notre premier cycle universitaire, nous
tenons à rendre hommage à tous ceux qui ont, de loin ou de
près, directement ou indirectement, contribué à
l'élaboration de ce travail. Je me souviens de vous tous qui avez
contribué, depuis mon enfance jusqu'à ce moment où je
rédige mon premier travail scientifique, à ce que je deviens
chaque jour.
Nos remerciements vont d'abord à notre Dieu
Tout Puissant pour le souffle de vie qu'il nous accorde.
Notre profonde gratitude au Professeur LUMANDE KASALI
Joseph, qui, malgré ses multiples occupations, a bien voulu accepter de
diriger ce travail.
Nous remercions particulièrement le Chef des
travaux Ir. BULAKALI BISIMWA Pacifique, Encadreur technico- scientifique, qui,
malgré ses multiples occupations scientifiques aussi, n'a cessé
de nous encourager en vue de l'aboutissement de nos recherches.
Nos sincères remerciements aux professeurs,
Chefs de travaux et Assistants de la Faculté des Sciences et
particulièrement à ceux du Département de Biologie pour
nous avoir élargi les horizons du savoir.
Nous manifestons nos sentiments de reconnaissance : A la
famille LUKUNDULA MASHANDA ;
A la famille BUGALAGAJA CHANGACHANGA ; A la famille
MIHUHI RUSAATI ;
A tous mes Oncles et Tantes
A mes frères, soeurs, cousins et cousines:
NGERU BYAMANA, NGULWE TUMAINI Wa RUSAATI, KIZA RUSAATI, BAHATI MUYUKU, BIIJA
RUSAATI, MUSHONIO RUSAATI Samuel, BASHONGA SITA, CUBAKA
LUKUNDULA, MUSA NGOTE, BUKIZE SENGIMA, BUSIME
CHANGACHANGA, FURAHA MATONGO, TUMBA MATONGO...
En fin, que tous mes compagnons de lutte avec qui nous
avons partagés les peines : BISIMWA KABWIKA, BONGO NGIALA, MABIKA NDIBU,
MALOM DEBENCE, MBUANGI Mathieu, BUNGIENA BALANGIDILA, MUNYERENKANA CIBOMBO,
BINDA LELO, KANIKA KILESHE, SUNGU NANIVAZO, LUMBWABU DAVINA, MUKUBU PIKA et
tous ceux dont les noms ne sont pas cités, trouvent dans ces pages
l'expression de ma vive reconnaissance.
INTRODUCTION
Le problème de la faim est une question
récurrente dans les pays où le rythme de la croissance
économique et de l'augmentation de la production vivrière reste
bien inférieure à celui de la hausse du nombre de bouche à
nourrir (Dufumier, 2004).
Pour sa croissance, tout être vivant a besoin
d'un régime alimentaire adéquat, équilibré ; dans
le cas contraire il accuse un retard dans son développement et/ou
appelé à disparaître (Anonyme, 2005).
En effet, Les tubercules du manioc, du fait de leur
richesse en amidon, constituent une source énergétique importante
dans l'alimentation humaine (Nout et al., 2003), mais ils sont pauvres en
protéines (Mémento, 1991). Les tubercules et les feuilles de
manioc sont les sources majeures de nourriture pour la plupart des habitants
des villes et des campagnes (Latham, 2008). Le manioc peut être
considéré comme la quatrième production
végétale pour sa contribution à l'alimentation de la
population mondiale après le riz, le blé et le maïs
(Agboregbe et al., 1995). L'Afrique a produit près de 55% de la
production mondiale de manioc en 1999. Les deux plus importants pays africains
consommateurs de manioc sont le Nigéria et la République
Démocratique du Congo, qui consomment à eux seuls le tiers du
manioc utilisé en alimentation humaine dans le monde (Nout et al.,
2003).
C'est pour cela, la qualité nutritive du manioc
doit être améliorée. Parmi les multiples solutions,
certains auteurs préconisent d'enfouir les légumineuses
fixatrices d'azote sous forme d'engrais vert, afin d'enrichir le sol
(Guillaumin et al., 1955). Dans ce travail, comme légumineuse, nous
avons opté pour le stylosanthes guianensis.
Eu égard de ce qui précède, notre
recherche tente d'évaluer l'influence de la densité de plantation
de Stylosanthes guianensis sur sa croissance végétative
et celle de Manihot esculenta CRANTZ variété
RAV.
Outre l'introduction et la conclusion, ce travail
comprend trois chapitres. Le premier chapitre présente la
littérature sur le Manihot esculanta CRANTZ et le
Stylosanthes guianensis. Le deuxième chapitre traite de
matériel et méthodes tandis que le troisième chapitre est
réservé aux résultats et à leur
discussion.
CHAPITRE I :
REVUE DE LA LITTERATURE
I.1. APERCU SUR LE MANIOC
I.1.1. ORIGINE ET SYSTEMATIQUE
Le Manihot esculanta CRANTZ est originaire de
l'Amérique du sud. L'histoire révèle qu'il était
déjà cultivé par les indigènes du brésil de
la Guyane et du Mexique à l'époque précolombienne (Van den
abeele et Van den put, 1956). Il fut amené en Afrique à la fin du
XVIè siècle par les navigateurs portugais (Raemaekers, 2001 ;
Léonard, 1962). Mais aujourd'hui cultivé sur une grande
échelle dans toutes les régions tropicales (Raven et al.
2007).
Concernant sa systématique, le manioc appartient
:
au règne : Végétal
à l'embranchement : Spermatophyte
à la classe : Angiosperme
à l'ordre : Euphorbiales
à la famille : Euphorbiacée
au genre : Manihot
à l'espèce : Manihot esculanta
(Judd et al., 2002 ;Soltner, 2005)
Quelques noms Vernaculaires
Umumbati (kifuliiru), Muhogo (Swahili), Dyoko(Kongo),
Mukyongo(Kilega), mumbarhi(Shi).
I.1.2. AIRE DE CULTURE ET ECOLOGIE
Le Manioc est une plante de zone tropicale humide
à grande faculté d'adaptation tant pour le climat que pour le sol
(Mémento, 1984). Il est largement cultivé dans de nombreuses
régions du monde situées entre 30° parallèle N et S
(Rivière, 1978).
Les températures annuelles moyennes pour une
croissance optimum se situent entre 25 et 29°C. Des températures en
dessous de 16°C lui
sont préjudiciables et la croissance
s'arrête en dessous de 10°C. C'est une plante héliophile qui
requiert une insolation abondante (van den abeele et Van den put, 1956).
Au-delà de 1800 m, le manioc se développe très lentement
(Raemaekers, 2001).
I.1.3. CARACTERISTIQUE BOTANIQUE ET MORPHOLOGIQUE
Le manioc est un arbuste, vivrier tropical (Anonyme,
1998), à tige dressée ou tortueuse qui suivant les conditions
écologiques, peut atteindre une hauteur de un à cinq
mètres. Cependant, pour les espèces cultivées, la taille
moyenne reste située entre deux et trois mètres (Barampama,
1992). Le diamètre de la tige ne dépassant pas deux- trois
mètres, sont en grandes parties remplies de moelle et de ce fait fort
fragiles. Comme toutes les euphorbiacées, ses diverses parties
contiennent du latex (Van den abeele et Van den put, 1956).
Racines tubéreuses et fasciculées riches
en amidon. Fleurs en grappe, avortant souvent: d'où multiplication par
bouture (Mémento, 1984). Au terme de leur croissance, les feuilles sont
généralement, grandes et palmées de deux à sept
lobes portées par un long et mince pétiole de couleur
rougeâtre ou vert pâles (Barampama, 1992). Le manioc est une plante
pluriannuelle, mais généralement cultivée comme plante
annuelle ou bisannuelle (Raemaekers, 2001).
I.1.4. IMPORTANCE ET USAGE
Le manioc est cultivé pour :
> L'alimentation humaine : Ces racines
tubérisées, constituent un produit alimentaire très
précieux, riche en glucide, lipides, vitamines et en sels
minéraux (Bezpaly, 1984).
> L'usage industriel : les racines sert à
fabriquer le tapioca (Meyer et al., 2004), fécule, biscuits et pates
alimentaires ; il permet aussi la fabrication du glucose et de l'amidon et
entre dans celle de l'alcool.
> L'alimentation du bétail et des poissons.
(Anonyme, 1992) Tableau 1. Valeur alimentaire du Manioc
|
Racines fraiches (%)
|
Cossette(%)
|
Farines(%)
|
|
Eau
|
61
|
14,8
|
13,7
|
|
Matières amylacées
|
33,6
|
74,3
|
78,9
|
|
Matières azotées
|
1,2
|
2,7
|
2,7
|
|
Matières grasses
|
0,4
|
1,5
|
0,5
|
|
Matières minérales
|
1,2
|
2,2
|
1,5
|
|
Cellulose
|
2,6
|
4,5
|
2,7
|
Le manioc constitue une réserve alimentaire
disponible en cas de disette (Mémento, 1991). Sa composition chimique
est présentée dans le tableau 2.
Tableau 2. Composition pour 100g de portion
consommable
|
Nom
|
Eau %
|
Energie (KJ)
|
Protéine (g)
|
Lipides (g)
|
Saccharides (g)
|
Cendres (g)
|
|
Manioc, fermenté, séché
|
14
|
1605
|
1,2
|
0,4
|
94
|
2,1
|
Source : Nout et al., 2003
I.1.5. CULTURE
Le manioc s'accommode de tous les sols dans les
régions tropicale et équatoriale (Clément, 1967).C'est une
plante très rustique tolérant une gamme de sols, hormis les sols
hydromorphes ou les sols trop sableux (Raemaekers, 2001). Il
préfère un sol léger bien drainé et riche en
potassium. L'azote favorise le développement des parties
aériennes et la présence d'endomycorhizes facilite la nutrition
phosphorée (Charrier, 1997). Il pousse également sur les sols peu
fertile s'ils sont profondément labourés (Latham et Konda Ku
Mbuta, 2007) à pH 6 (Mémento, 1984).
La culture se pratique à l'état pur ou
en mélange avec d'autres plantes vivrières telles que mais, riz,
banane (Van den abeele et Van den put, 1956). La plantation se fait à
des écartements de 1m x 1m en culture pure. En
culture mixte ; la densité est moins
élevée et les écartements peuvent atteindre de deux
à trois mètres en tous sens (Van den put, 1981).
Le manioc se reproduit par la voie
végétative (bouture) ou par la voie générative
(graines). Le bouturage donne des plants vigoureux, génétiquement
identiques à la plante mère. C'est le bouturage qui est
utilisé pour réaliser les champs de manioc. La multiplication par
graines donne des plants génétiquement différents. Ce mode
de reproduction est utilisé pour l'amélioration
génétique et, pour arriver aux boutures vulgarisables à
partir des graines il faut attendre sept ans de travail (kabeya,
2004).
Un fragment de 12 à 40 cm prélevé
sur la partie la plus lignifiées de la tige, assure un taux de reprise
proche de 100%. Dans les sols sableux, afin de réduire les risques
liés à la sécheresse, la bouture est plantée de
manière oblique ou verticale et enfoncée aux deux tiers dans le
sol. Dans les sols argileux, sa plantation est horizontale et superficielle
pour limiter les risques liés à l'anoxie (Charrier,
1997).
Le manioc est sujet des attaques des maladies et des
ravageurs. Le tableau 3 donne les dégâts, les agents
pathogènes et les ravageurs, symptômes observés ainsi que
les stratégies de lutte contre ses pestes.
Tableau 3. Protection phytosanitaire
|
Maladie / Dégâts
|
Agent causal
|
Symptôme
|
Lutte
|
|
Maladie de
cierge
|
Xanthomonas (Bactérie)
|
-Taches angulaires sur
feuilles,
-Flétrissement et chute des feuilles,
-Desséchement des tiges.
|
-Utiliser les variétés
résistantes
-Prélever des
boutures sur matériel sain et sur parties
médianes
-Respecter la rotation des cultures
|
|
Mosaïque
|
Virus transmis par une mouche (Bemisia
tabacii)
|
-Sclérose de certaines
parties des feuilles -Recroquevillement des
feuilles
malades
-Réduction de dimension des feuilles
|
Utiliser des variétés
tolérantes
|
|
Anthracnose
|
Colletotrichum manihotis
(Champignon)
|
-Présence de chancres sur tiges
-Etranglement apical de
tige et sa mort.
|
Utiliser les variétés
résistantes
|
|
Cochenille
|
Phenacocus manihoti
|
-Rabougrissement et buissonnement des pousses
terminales
-Raccourcissement des entre-noeuds
-Enroulement foliaire
|
-utiliser les variétés
résistantes
|
|
Acarien vert
|
Mononychellus
|
Chlorose et réduction de la surface
foliaire
|
Utiliser les variétés
résistantes
|
(Anonyme, 1992)
I.1.6. RECOLTE
La durée végétative
jusqu'à la maturité est très différente suivant que
le manioc est de type doux ou de type amer. Le manioc amer nécessite
normalement beaucoup plus de temps que le manioc doux pour arriver à
maturité. Le manioc doux est récolté à 10-12 mois
au plus tard, tandis que les variétés les plus précoces de
manioc amer arrivent à maturité au plus tôt à 15
mois et les plus tardives nécessitent jusqu'à 24 mois et plus. Le
manioc peut être
conservé dans le sol et être
récolté frais au fur et à mesure des besoins du
producteur. Le manioc est donc une culture de sécurité
(Nyabyenda, 2005). Les rendements en manioc obtenus au Congo sont variables
suivant les régions, la qualité du sol, les
variétés cultivées et le mode de culture adaptée
(Anonyme, 1954).
I.2. APERCU SUR LE STYLOSANTHES GUIANENSIS
I.2.1 ORIGINE ET SYSTEMATIQUE
Originaire de L'Amérique latine (Mohlenbrock,
1963), le Stylosanthes guianensis (stylo) a été
introduit en Afrique centrale probablement en 1947(Latham et Konda Ku Mbuta,
2007).
Concernant sa systématique, il appartient
:
au Règne : Végétal,
à l'embranchement : Spermatophyte,
à la classe : Angiosperme,
à l'ordre : Fabales,
à la famille : Fabacée,
au genre : Stylosanthes,
et à l'espèce : Stylosanthes guianensis
(T'Mannetje, 1984)
I.2.2. AIRE DE CULTURE ET ECOLOGIE
On le trouve au niveau de la mer jusqu'à 1800m
d'altitude. Il supporte les températures fraîches et pousse sous
une pluviométrie allant de 700 à 2500 mm. C'est une plante qui
aime le soleil (Anonyme, 1973) et tolère bien la sécheresse mais
pas l'engorgement (Raemaekers, 2001).
I.2.3. CARACTERISTIQUES BOTANIQUE ET
MORPHOLOGIE
Plante annuelle ou pérenne selon la
pluviométrie de la région et selon sa gestion (Mémento,
2006). De 30 à 120 cm de haut, devenant ligneuse avec l'âge ; les
feuilles ont trois folioles lisses ou légèrement poilues de 0,5
à 4 cm de long et 0,2 à 1,5 cm de large (Latham et Konda Ku
Mbuta, 2007). Inflorescence en glomérules à fleurs jaunes
(Boudet, 1991) mais pas toujours (Anonyme, 1973). Le stylosanthes
guianensis a un système racinaire puissant (Havard- Duclos, 1967)
pouvant atteindre 1 m de long (Latham et Konda Ku Mbuta, 2007).
I.2.4. IMPORTANCE ET USAGE I.2.4.1.
IMPORTANCE
Le Stylosanthes guianensis présente
plusieurs bénéfices sue les plans : agronomique, environnement et
économique.
> Sur le plan agronomique : En tant que
précèdent cultivar : amélioration de la structure des sols
liée à son important système racinaire et reliquat
azoté disponible dans le sol pour la culture suivante (40 à 50
kg/ ha). Il joue aussi un rôle d'épurateur de nitrates grâce
à ses possibilités de captage d'azote en profondeur est du plus
vif intérêt (Gallais et Bannerot, 1992).
> Sur le plan environnemental : Il permet de
remettre en valeur des zones abandonnées, en particulier grâce
à la possibilité qu'il offre de contrôler le
striga.
> Sur le plan économique : il ne demande
pratiquement pas d'investissement, le temps de travaux sont fortement
réduits dès la première année en semis directe par
suppression du labour et réduction importante du temps de
désherbage en particulier (Husson et al., 2008).
I.2.4.2. USAGE
Le Stylo est un bon fourrage avec une teneur en
protéine de 12 à 18%, mais seulement une faible quantité
qui est assimilable (Latham et Konda Ku Mbuta, 2007). Il est
préféré sous forme de foin (Anonyme, 2004)
I.2.5. CULTURE
En raison de la symbiose bactérienne (avec
Rhizobium meliloti) indispensable à son établissement et
à son développement, de sa sensibilité à l'air du
sol et du besoin d'oxygène des bactéries, il exige un sol sain
dont le pH
est au moins égal à 6,3 (Clément,
1987). On peut le planter dans la végétation naturelle,
même dans l'imperata à 1,20 m en tous sens en soutenant
le départ avec 60 g de phosphate de chaux par pieds (Havard-Duclos,
1967).
Les doses de semis recommandées sont de 2
à 4 kg de graines décortiquées (sans enveloppes) germant
à plus de 80% ; le semis est fait en ligne ou à la volée
(Mémento, 2006).
I.2.6. RECOLTE
Pour la production de semences, le Stylosanthes
guianensis fleurit toute l'année avec un pic en fin de saison des
pluies (Mémento, 2006).
CHAPITRE II :
MATERIEL ET METHODES
II.1. MATERIEL
II.1.1. MILIEU EXPERIMENTAL ET SUBSTRAT DU VEGETAL
L'expérimentation a été
effectuée dans le jardin expérimental du Département de
Biologie, de la Faculté des Sciences de l'Université de Kinshasa,
situé à 440 m d'altitude, 15° 17' 17» de longitude Est
et 4° 21'17» de latitude Sud (Bulakali et al. 1992). L'amplitude
thermique est de 9,7°c (station météorologique de
Binza).
Le taux moyen d'humidité de l'air est de 81%
à 33% pour les mois humides et 74% pour les minima en Août et
septembre. (Khasa, 1987). D'après les critères de Köppen, la
région de Kinshasa se caractérise par un climat chaud humide du
type AW4, avec une saison sèche marquée de quatre mois, pendant
l'hiver austral (Flouriot et al, 1975).
Les propriétés chimiques du sol du milieu
expérimental sont présentées dans le tableau
4.
Tableau 4. Propriété chimique du sol
utilisé
|
pH
|
5,49
|
|
Azote
|
0,043 %
|
|
Carbone
|
0,64 %
|
|
Carbone/ Azote
|
14,9 %
|
|
Matière organique
|
1,1008 %
|
|
Phosphore assimilable
|
0,024 %
|
|
Capacité d'échange cationique
|
32,70 m éq/ 100 gr
|
II.1.2. PLANTE DE COUVERTURE
Le Stylosanthes guianensis souche CADIM
(Centre d'Appui au Développement Intégré de Mbakana) a
servi des plantes de couverture pour les boutures de manioc.
II.1.3. PLANTE TEST
Comme plante test, nous avons utilisé les
boutures de Manioc,
variété RAV.
II.2. METHODES
II.2.1. AMENAGEMENT DU TERRAIN
Trois opérations ont été
effectuées pour aménager l'emplacement de
l'expérimentation : défrichage, délimitation des plates
bandes et labour.
> Défrichage : Il avait pour but de rendre
le terrain propice à la culture de Stylosanthes guianensis et
du Manihot esculenta CRANTZ ; et s'est fait au moyen d'une houe et
d'une bêche.
> Délimitation des plates-bandes : Elle a
été faite après le défrichement afin de
déterminer la surface nécessaire pour l'aménagement de 12
platesbandes de 3,75 m 2 (1,50 m x 2,50 m). Cette
délimitation s'est faite à l'aide des piquets et d'une corde en
nylon.
> Labour : Cette opération a
été réalisée en vue d'aérer le sol et
permettre l'action microbienne importante à la vie de la plante,
ameublir la terre pour faciliter la pénétration des racines des
Stylosanthes guianensis et Manihot esculanta CRANTZ et
favoriser l'humidification du sol.
II.2.2. PLANTATION DES BOUTURES ET SEMIS DE Stylosanthes
guianensis
Des fragments de manioc de 25 cm avec au moins 5
noeuds ont été plantés enfoncés aux trois quart
dans le sol. Quant au Stylo, les graines trempées dans de l'eau chaude
pendant 24 heures, ont été plantées en raison de 5 graines
par trou d'environ 0,5 cm et puis couvertes avec de l'herbe.
II.2.3. DISPOSITIF EXPERIMENTAL
Dans cet essai, un dispositif expérimental en
blocs complets aléatoires avec quatre répétitions par
traitement et avec comme facteurs de traitement, l'écartement de
Stylosanthes guianensis, souche locale CADIM. Il comportait les quatre
traitements suivants :
1. T0 : le manioc seul (1m x 1m)
2. T1 : le manioc (1 m x 1 m) et stylo (12,5
cm x 12,5 cm)
3. T2 : le manioc (1 m x 1 m) et stylo (25 cm
x 25 cm)
4. T3 : le manioc (1 m x 1 m) et stylo (50 cm
x 50 cm)
II.2.4. ENTRETIEN DES PLANTS
Chaque plate bande a été arrosée
trois fois par semaine en raison de deux arrosoirs par jour. Pour les soins
culturaux, le sarclage était effectué chaque deux
semaines.
II.2.4. PARAMETRES ETUDIES
A la récolte des données, les
paramètres suivants ont été étudiés
:
1. Nombre des bourgeons germés par
bouture
2. Nombre des feuilles par tige
3. Nombre des ramifications
4. Taille da la tige
5. Diamètre au collet de la tige
II. 2.5. ANALYSES STATISTIQUES DES RESULTATS
Les résultats des différents
paramètres étudiés ont été traités
par l'analyse de la variance (P<0,05), ANOVA, au moyen du logiciel R et la
comparaison des moyennes par le test de Tukey HSD au seuil de
probabilité de
a) La moyenne
b) LSD ou P. P. D. S = t a 2 (N --
a)
j2(NE)
n
N
X = 11
Xi
1=1
CHAPITRE III :
RESULTATS ET DISCUSSION
III.1. RESULTATS
Dans le présent travail, quatre traitements ont
été observés en vue d'étudier l'incidence de la
densité de plantation de Stylosanthes guianensis sur sa
croissance végétative et celle de Manihot esculanta
CRANTZ
Tableau 5. Influence des différents traitements
sur la croissance de Maninot esculenta CRANTZ associé au
Stylosanthes guianensis Souche locale CADIM, après cinq mois au
champ.
|
Traitement
|
Nombre des feuilles
|
Bourgeon germé
|
Taille de la tige (cm)
|
Ramification
|
Diamètre de la tige au collet (mm)
|
|
T0
|
30,75 a
|
1,375 a
|
64,5 a
|
0,75 a
|
11,69 a
|
|
T1
|
22,375 a
|
1 a
|
59,25 a
|
1,125 a
|
8,29125 a
|
|
T2
|
35,375 a
|
1,5 a
|
70,125 a
|
1,5 a
|
10,745 a
|
|
T3
|
31,625 a
|
1,125 a
|
58,75 a
|
1,25 a
|
10,7325 a
|
|
P.P.D.S
|
-
|
-
|
-
|
-
|
-
|
|
Anova
|
DNS
|
DNS
|
DNS
|
DNS
|
DNS
|
Les valeurs d'une même colonne suivie par la
même lettre sont significativement non différentes au seuil de
probabilité de 5 %.
Légendes : Anova : Analyse de la variance
;
DNS : Différence non significative ;
P.P.D.S : Plus petite différence significative
;
T0 : Traitement témoin, le manioc seul
;
T1 : Traitement avec l'écartement de Stylo 12,5m X
12,5m ;
T2 : Traitement avec l'écartement de Stylo 25m X
25m ;
T3 : Traitement avec l'écartement de Stylo 50m X
50m ;
Tableau 6. Influence des écartements de
Stylosanthes guianensis
|
Traitement
|
Taille de la tige (cm)
|
Nombre de ramification
|
Poids frais
|
|
T1
|
137,995 a
|
17,665 a
|
133,5815 a
|
|
T2
|
107,83 a
|
19,165 a
|
124,4595 a
|
|
T3
|
89,5 a
|
15,33 a
|
178,33165 a
|
|
P.P.D.S
|
-
|
-
|
-
|
|
Anova
|
DNS
|
DNS
|
DNS
|
Les valeurs d'une même colonne suivie par la
même lettre sont significativement non différentes à P<
0,05.
L'analyse de la variance révèle que,
statistiquement, il n'ya aucune différence significative (p<0, O5)
entre les traitements. La densité de stylosanthes guianensis
n'a pas influencé nos paramètres comparativement au témoin
(T0) après cinq mois de culture.
III.2. DISCUSSION
D'une manière générale,
l'écartement de Stylosanthes guianensis n'a pas stimulé
de manière significative la taille de la tige, la ramification, le
diamètre de la tige au collet, le nombre de bourgeon germé et le
nombre de feuilles comparativement au témoin.
CONCLUSION
Dans le cadre de notre travail, nous avons
préconisé comme but la rationalisation de la culture de manioc en
étudiant l'influence de la densité de Stylo sur sa
croissance.
D'après les résultats obtenus, la
densité de Stylo n'a pas stimulé significativement (P<0,05)
tous les paramètres étudiés après cinq mois de
culture.
Etant donné l'importance de ce travail, nous
suggérons aux générations futures de poursuivre
l'expérience en plantant le manioc au moins un mois avant le Stylo et en
dosant la teneur en protéines brutes du manioc.
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Table des matières
EPIGRAPHE 2
DEDICACE 3
AVANT-PROPOS 4
INTRODUCTION 6
CHAPITRE I : REVUE DE LA LITTERATURE 8
I.1. APERCU SUR LE MANIOC 8
I.1.1. ORIGINE ET SYSTEMATIQUE 8
I.1.2. AIRE DE CULTURE ET ECOLOGIE 8
I.1.3. CARACTERISTIQUE BOTANIQUE ET MORPHOLOGIQUE
9
I.1.4. IMPORTANCE ET USAGE 9
I.1.5. CULTURE 10
I.1.6. RECOLTE 12
I.2. APERCU SUR LE STYLOSANTHES GUIANENSIS
14
I.2.1 ORIGINE ET SYSTEMATIQUE 14
I.2.2. AIRE DE CULTURE ET ECOLOGIE 14
I.2.3. CARACTERISTIQUES BOTANIQUE ET MORPHOLOGIE
14
I.2.4. IMPORTANCE ET USAGE 15
I.2.5. CULTURE 15
I.2.6. RECOLTE 16
CHAPITRE II : MATERIEL ET METHODES 17
II.1. MATERIEL 17
II.1.1. MILIEU EXPERIMENTAL ET SUBSTRAT DU VEGETAL
17
II.1.2. PLANTE DE COUVERTURE 17
II.1.3. PLANTE TEST 18
II.2. METHODES 18
II.2.1. AMENAGEMENT DU TERRAIN 18
II.2.2. PLANTATION DES BOUTURES ET SEMIS DE
Stylosanthes guianensis 18
II.2.3. DISPOSITIF EXPERIMENTAL 19
II.2.4. PARAMETRES ETUDIES 19
II. 2.5. ANALYSES STATISTIQUES DES RESULTATS
19
CHAPITRE III : 21
RESULTATS ET DISCUSSION 21
III.1. RESULTATS 21
III.2. DISCUSSION 22
CONCLUSION 23
REFERENCES BIBLIOGRAPHIQUES 24
Table des matières 29
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