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Essai d’une étude comparée de la qualité des eaux brutes et traitées de la source Ain Asserdoun (Beni-Mellal) et ceux du barrage Ait Massoud (Khouribga).


par badi et Otmanovic Badi et otmanovic
Université Sultan Moulay Slimane - Licence Sciences de la Vie  2019
  

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2.3 Techniques d'analyses :

La situation de l'eau présente un risque de contamination par des bactéries pathogènes (Coliformes, Escherichia coui...), pour cette raison on fait des analyses basées sur deux techniques pour détecter ces micro-organismes présents dans l'eau traitée et l'eau brute. a. Filtration sur membrane (Eau Traitée) :

v Principe de la méthode :

On procède à une filtration par un appareil de filtration sur membrane. La membrane est en esters de cellulose, de porosité 0.45 um, susceptible de retenir les bactéries (Rodier et al, 1997). Un échantillon de 100 ml d'eau est filtré sur cette membrane, cette dernière est déposée à la surface d'un milieu gélosé. Après incubation, on compte le nombre de colonies.

Figure 24 : Système de filtration sur membrane

v Matériel utilisé :

· Matériels de stérilisation (autoclave, four)

· Système de filtration sur membrane

· Etuve ou enceinte thermo statée 37°C #177; 1

· Gélose au « Tergitol » 7 et « Slanetz et Bartley » (annexe 4, planche photos 1)

· Matériel de microbiologie : boites de pétri stériles, pipettes 1 ml (usage unique), flacons stériles.

Figure 25 : Autoclave

v Protocol expérimental :

· Nettoyer le robinet avec un tissu propre, stériliser à la flamme l'embouchure du robinet et laisser couler l'eau pendant 1 à 2 min.

· Préparer une zone stérile puis placer autour du bec Bunsen les boites de pétri avec gélose au Tergitol 7 et les pipettes stériles.

· Placer la membrane stérile sur le système de filtration.

· Mettre en place la pompe à vide.

· Agiter le flacon vigoureusement.

· Verser 100 ml d'échantillon d'eau et filtrer en aspirant avec la pompe à

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vide.

· En zone stérile, ouvrire le système de filtration et retirer la membrane avec une pince stérile.

· Mise en culture en déposant la membrane sur la gélose, les éléments nutritifs de ce dernier traversent la membrane, ce qui permet le développement des bactéries en surface.

· Incuber les boites à l'étuve à 37 °C pendant 24 jusqu'à 48h pour la recherche de coliformes. Pour la recherche de coliformes thermo tolérants, placer les boites à 44 °C pendant 24h.

b. La méthode de NPP (Eau Brute) :

v Principe de la méthode :

La méthode du nombre le plus probable est une estimation statistique du nombre de micro-organismes qu'on peut trouver dans l'eau d'une manière aléatoire, elle est applicable sur les eaux brutes ayant une teneur plus ou moins élevée en MES, elle consiste à

ensemencer trois milieux de culture par dilution, les tubes ensemencés contiennent un milieu nutritif, milieu Lauryl pour les coliformes avec introduction de cloche de Durham dans ce dernier, après incubation on compte le nombre des tubes positifs (dégagement de gaz, trouble, changement de couleur) pour chaque dilution et on fait la lecture du NPP correspondant en utilisant la table de Mac Grady. Il s'agit d'une méthode quantique et non pas énumératif. (23)

v Matériel utilisé :

· 3 tubes contenant 9 ml de diluant (eau distillée).

· 3 pipettes stériles en plastique de 1 ml.

· Bec bunsen pour garder la stérilité de la zone de travail.

· 1 vortex.

v Protocole expérimentale :

Ø Coliformes totaux et fécaux : TEST PRESOMPTIF :

· Stérilisation de la zone de travail

· Ensemencement :

1 ml

0,1 ml

10 ml

Simple
concentration

Double
concentration

Buillon
Lauryl sulfate
de tryptose

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Figure 26 : Schéma désignant l'ensemencement de l'échantillon à 3 différentes dilutions
recherchant les coliformes totaux et fécaux. (Annexe 4, planche photos 1).

· Incubation : à 37°C#177; 1°C pendant 48h

· Dénombrer les tubes positifs : trouble + gaz

· Repiquer les tubes positifs sur les milieux confirmatifs : BEA.

TEST CONFIRMATIF : (annexe 4, planche photos 1)

Coliformes totaux Coliformes fécaux

Ensemencement des tubes positifs

Vert brillant EC medium

Incubation

37°C #177; 1°C/48h 44°C#177; 0,5°C/24h

·

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Dénombrement des tubes positifs : trouble + gaz

· Choix du triplet ? lecture-table de Mac Grady? NPP/100 ml.

Ø Streptocoques fécaux : TEST PRESOMPTIF :

· Stérilisation de la zone de travail

· Ensemencement :

0,1 ml

Simple
concentration

1 ml

Buillon glucosé à l'azide de sodium

Double
concentration

10 ml

Figure 27 : Schéma désignant l'ensemencement de l'échantillon à 3 différentes dilutions

recherchant les streptocoques fécaux. (Annexe 4, planche photos 2).

· Incubation : à 37°C#177; 1°C pendant 48h

· Dénombrer les tubes positifs : trouble et/ou dépôt

· Repiquer les tubes positifs sur les milieux confirmatifs : Litsky

TEST CONFIRMATIF :

· Dénombrer les tubes positifs : trouble + pastille violette éventuellement au fond du tube

· Choix du triplet ? lecture-table de Mac Grady? NPP/100 ml (annexe 3).

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