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Caractérisation génomique des bactériophages isolés en Côte d’Ivoire.


par Aboubacar SYLLA
Université Felix HOUPHOUET- BOIGNY - Master 2 biotechnologies-biosécurité 2017
  

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2.6.2. Lyse virale des phages dans les plugs d'agarose

Une préparation de 5 mL de tampon de lyse [(Phage Lysis : 50 mM Tris, 50 mM EDTA, pH 8,0), et SDS à 1 %] additionné de 25 ìL de protéinase K à 20 mg/mL est mis un tube de 5mL. Les tubes sont ouverts délicatement, les plugs d'agarose sont rétirés des moules et transférés dans les tubes correspondants. Ces tubes sont alors placés dans un bain-marie à 54 °C pendant 2 heures. Le tampon de lyse est soigneusement éliminé des tubes à l'aide d'une pipette par aspiration. Les plugs sont lavés avec 5 mL de tampon TE (10 mM Tris, 1 mM EDTA, pH 8,0) stérile qui est chauffé à 54 °C pendant 15 min dans un bain d'eau sous faible agitation. Les tubes contenant les plugs sont rétirés du bain-marie, et le tampon est aspiré soigneusement en veillant à ce que les plugs ne soient pas cassés. Cette opération de lavage avec le tampon TE est répétee trois fois et deux fois avec de l'eau. Cependant le tampon est changé après chaque lavage. Les plugs sont alors stockés à +4 °C jusqu'à ce qu'ils soient prêts à être soumis à digestion par les enzymes de restriction (Figure 6).

2.6.3. Digestion enzymatique du génome

Les plugs d'agarose sont soumis à une pré-digestion selon le mélange réactionnel (Tableau VIII) avant de réaliser une digestion enymatique proprement dite selon le mélange réactinnel (Tableau IX) dans un bain marie à 37 °C pendant 2 heures. Les plugs de phages sont rétirés du tampon TE avec un petit spatule plate désinfecté à l'éthanol, coupés à l'aide d'un bistouri ou une lame de scalpel, le long de l'axe des bouchons en faisant des tranches d'environ 2 mm de la longueur prise. Les portions restantes

Matériel et Méthodes

des bouchons sont stockés à 4°C dans le tampon TE. Les plugs découpés sont placés dans un volume de 200 uL de tampon de restriction dilué à 1X de concentration pour une pré-digestion (Tableau VIII), puis incubés à 37°C pendant 10 à 15 min à la température ambiante. Après l'incubation, le tampon est aspiré à l'aide d'une micropipette et 200 uL de master mix de digestion (Tableau IX) est ajouté à chaque tube puis incubé à la température appropriée de l'enzyme XbaI ou XhoI pendant 2 heures. Après l'incubation, le tampon de restriction est aspiré puis les plugs découpés sont mis en suspension dans 200 uL de TBE 0,5X pendant 5 min (Figure 6).

2.6.4. Électrophorèse sur gel d'agarose

Avant la migration, un gel d'agarose de 1% est préparé dans un tampon de TBE 0,5X puis conservé au bain mari à à 55 °C. Ensuite, la cuve d'électrophorèse en champ pulsé CHEF-DRIII system (Bio-Rad Laboratoires) est remplie avec 2,2 litres de tampon 0,5X et l'automate est laissé allumer jusqu'à ce que la température de la cuve de migration passe à 14°C. Parallèlement les plugs découpés sont déposés le long du peigne. On laisse refroidir entre 45-50 °C et le gel préparé est conservé à 55 °C avant de le couler dans la direction de la longueur de l'axe. Après que le gel soit solidifié avec les plugs sur le peigne, on rétire le peigne puis on le dépose dans la cuve électrophorèse. L'électrophorèse est réalisée à 14°C avec un voltage à 6 V/cm, pendant 6 heures avec un temps de pulsation de 2,0-12,0 sec, et un angle de 120° (des temps d'impulsion peuvent être nécessaires pour optimiser la séparation des bandes) (Figure 6). Une fois la migration terminée, le gel est immergé dans une solution de sybr safe 10000X (40 uL dans 400 mL d'eau déionisée) pendant 30 min sous une faible agitation. Le gel est ensuite décoloré dans 500 mL d 'eau désionisée pendant 20 min et à chaque 10 min l'eau désionisée est changée. Le gel est examiné à l'aide d'un automate appélé GelDoc (BioRad Laboratoires) couplé à un ordinateur puis capturé, imprimé et enregistré l'image du gel coloré avec un système de documentation de gel.

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Matériel et Méthodes

Tableau VIII : Mélange réactionnel de la pré-digestion enzyamtique du PFGE

Réactifs

Volume de réactifs par plug
(bouchon) en ìL

Volume de réactifs pour 10
plugs (bouchon) en ìL

H20

180

1800

Buffer 10X Enzyme

20

200

Volume Total

200

2000

Tableau IX: Mélange réactionnel de la digestion enzyamtique du PFGE

Réactifs

Volume de réactifs par plug
(bouchon) en ìL

Volume de réactifs pour 10
plugs (bouchon) en ìL

H20

173

1730

Buffer 10X Enzyme

20

200

BSA 10 ìg / ìL

2

20

XbaI ou XhoI 10 U/ ìL

5

50

Volume Total

200

2000

Matériel et Méthodes

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"L'ignorant affirme, le savant doute, le sage réfléchit"   Aristote