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Etude de la toxicité systémique de l'extrait aqueux du mélange des plantes Aframomum melegueta, Mondia whitei, Piper guineense, et Zingiber officinale chez le rat

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par Jules César Junior Bayiha
Université de Yaoundé 1 - Master 2011
  

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II.3.2.7. Pathologie

Ø Autopsie générale : Tous les animaux de l'étude ont fait l'objet d'une autopsie générale. Le foie, les reins, les poumons, la rate, les gonades et le coeur de tous les animaux (à l'exception des animaux sacrifiés ou mort avant la fin de l'essai) ont été débarrassés de tout tissu adhérent et pesés à l'état frais aussitôt après la dissection, afin d'éviter leur dessiccation. Après la pesée, ces organes ont été conservés dans du liquide de Bouin aqueux fort pour les examens histopathologiques. Le poids relatif du foie, des reins, des poumons, de la rate, des gonades, et du coeur a été déterminé par la formule :

Ø Histopathologie : Les organes d'intérêts ont été conservés dans du Bouin aqueux fort pour y être fixés. Le liquide de Bouin aqueux fort a été obtenu après mélange homogénéisé des substances suivantes : Acide acétique glacial (1 volume), Formol pur du commerce (5 volumes), Acide picrique à saturation dans l'eau (15 volumes). Le mode opératoire suivant a ensuite été employé pour la réalisation des coupes histologiques :

1)- « Trimming » : des tranches fines et régulières de chaque organe fixé ont été prélevées à l'aide d'un bistouri, puis rangées dans des cassettes.

2)- Déshydratation :les cassettes ont ensuite été passées dans des bains d'éthanol de concentration croissante : éthanol 50° (1h) ? éthanol 70° (1h) ? éthanol 95° n°1 (1h) ? éthanol 95° n°2 (1h30mn) ? éthanol 100° n°1 (1h) ? éthanol 100°n°2 (1h30mn) ? éthanol 100°n°3 (2h) ; les cassettes ont ensuite été passées dans 2 bains de xylènes respectivement 1h et 2h ; les cassettes ont enfin été passées dans 3 bains de paraffine à 60°C respectivement 1h, 1h30 et 2h.

3)- Inclusion :les tissus ont ensuite été placés dans des moules remplis de paraffine en fusion qui a ensuite été mise à solidifier sur une surface froide après orientation appropriée du tissu dans le bloc.

4)- Coupes :des coupes de 5 um des blocs ont été réalisée à l'aide d'un microtome. Une fois coupées, les sections ont été mises à déplissées dans un bain-marie (environ 40°C) puis récupérées sur des lames. Les lames ont ensuite été laissées 24h à l'étuve (45°C) avant la coloration.

5)- Coloration :les coupes ont ensuite été passées dans une batterie de déparaffinage constituée d'une série de bains de 5 à 10 mn chacun selon la séquence suivante : xylène n°1 ? xylène n°2 ? xylène n°3 ? éthanol à 100° n°1 ? éthanol à 100° n°2 ? éthanol à 100° n°3 ? éthanol à 95° ? éthanol à 70° ? eau distillée. Les coupes ont ensuite été immergées 10 mn dans un bac contenant de l'hématoxyline de Mayer, puis rincées pendant 10 mn à l'eau du robinet courante. Les coupes ont ensuite été passées dans un bain d'éthanol 95° pendant 5 mn, puis elles ont été immergées 5 mn dans de l'éosine alcoolique 0,5% + 40 ul d'acide acétique par 100 ml de solution. Les coupes ont ensuite été déshydratées dans de l'éthanol 100° (3 × 5 mn), éclaircies dans du xylène (3 × 5 mn).

6)- Montage :une fois sortie du xylène, quelques gouttes de résine ont été déposées sur les coupes, puis ces dernières ont été recouvertes d'une lamelle de verre pour l'observation au microscope.

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"Qui vit sans folie n'est pas si sage qu'il croit."   La Rochefoucault