3.1.2 SERIE B
3.1.2.1 Sous série 1 : J0
Résultats d'analyse des prélèvements de
surface, des prélèvements d'eau et des contenus des OAC (tableaux
16,17 et 18).
Tableau 16 : Analyse des prélèvements de
surface
|
SITE
DES CHIFONN-
PRELEVEMENTS ETTE
|
|
ECOUVI
-LLONS
|
|
|
Couvoir
A
|
Couvoir
B
|
Couvoir
C
|
Couvoir
A
|
Couvoir
B
|
Couvoir
C
|
|
SALLE DE C1-
RECEPTION DES
|
Klebsiella
|
E. coli
|
E. coli
|
Pool 1
|
Enterobact
er
|
E. coli
|
Culture
négative
|
|
O.A.C
|
|
|
|
|
|
|
|
|
SALLE DE C3-C4
PRECHAUFFAGE
|
Strep D
|
Enterobact
er
|
Enterobact
er
|
Pool 2
|
Culture
négative
|
E. coli
|
E. coli
|
|
SALLE C5-C6
|
Staph C -
|
Culture
|
Culture
|
Pool 3
|
E. coli
|
Culture
|
E. coli
|
|
D'INCUBATION
|
|
négative
|
négative
|
|
|
négative
|
Staph C -
|
|
PLATEAUX /
|
/
|
/
|
/
|
Pool 4
|
E. coli
|
Staph C -
|
Culture
négative
|
|
INCUBATEURS C7-C8
|
Culture
|
Culture
|
E. coli
|
Pool 5
|
Culture
|
Culture
|
Culture
|
|
négative
|
négative
|
|
|
négative
|
négative
|
négative
|
|
SALLE D'ECLOSION C9-C10
|
E. coli
|
Culture
négative
|
Culture
négative
|
Pool 6
|
E. coli
|
Strep D
|
Strep D
|
|
ECLOSOIR C11-C12
|
Culture
négative
|
E. coli
|
Culture
négative
|
Pool 7
|
E. coli +
enterobact
er
|
E. coli
|
E. coli
|
|
CAISSES DE /
TRANSFERT
|
/
|
/
|
/
|
Pool 8
|
E. coli
|
Culture
négative
|
Culture
négative
|
Tableau 17 : Analyse de l'eau
|
Couvoir A
|
Couvoir B
|
Couvoir C
|
|
Germes totaux à 37°C /24 Heures
|
1200 UFC
|
800
|
300
|
|
Coliformes totaux
|
1 UFC
|
3
|
2
|
|
Salmonelles
|
absence
|
absence
|
absence
|
|
Streptocoques fécaux
|
0
|
1
|
0
|
Tableau 18 : Analyse du contenu des O.A.C
Pools Couvoir A Couvoir B Couvoir C
|
P1
|
P2
|
P3
|
P4
|
P5
|
P6
|
P7
|
P8
|
P9
|
P10
|
P11
|
P12
|
|
Culture
négative(_)
|
_
|
_
|
_
|
_
|
_
|
_
|
_
|
_
|
_
|
_
|
_
|
|
Culture
négative(_)
|
_
|
_
|
_
|
_
|
_
|
_
|
_
|
_
|
_
|
_
|
_
|
|
Culture
négative(_)
|
_
|
_
|
_
|
_
|
_
|
_
|
_
|
_
|
_
|
_
|
_
|
3.1.2.2 Sous série 2 : J8
Résultats d'analyse de la surface des coquilles et du
contenu des oeufs embryonnés (tableaux 19 et 20)
Tableau 19 : Analyse de coquille des oeufs
embryonnés
|
pools
|
P1
|
P2
|
P3
|
P4
|
P5
|
P6
|
P7
|
P8
|
P9
|
P10
|
P11
|
P12
|
|
Couvoir
|
|
Culture
|
Strep D
|
|
Strep D
|
|
|
|
|
|
|
|
|
E. coli
|
négative
|
|
_
|
|
E.coli
|
_
|
_
|
_
|
_
|
E. coli
|
_
|
|
A
|
|
(___)
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Couvoir
|
Strep D
|
Culture
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
négative
|
_
|
E. coli
|
_
|
_
|
_
|
E. coli
|
_
|
_
|
_
|
_
|
|
B
|
|
(___)
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Couvoir
|
|
|
|
Culture
|
|
Citroba
|
|
|
Citroba
|
|
|
|
|
C
|
Enteroba
cter
strepD
|
E. coli
|
Klebsiella
|
négative
(___)
|
_
|
cter
|
_
|
E. coli
|
cter
|
_
|
_
|
_
|
Tableau 20 : Analyse du contenu des oeufs
embryonnés
|
Contenu des oeufs
embryonnés
|
|
Pools
|
|
P1
|
|
P2
|
|
P3
|
|
P4
|
|
P5
|
|
P6
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Couvoir A
|
|
Culture négative(j
|
|
_
|
|
_
|
|
_
|
|
_
|
|
E. coli
|
|
Couvoir B
|
|
|
|
_
|
|
|
|
_
|
|
|
|
_
|
|
|
Culture négative(j
|
|
|
_
|
|
|
_
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Couvoir C
|
|
Culture négative(j
|
|
_
|
|
_
|
|
_
|
|
_
|
|
_
|
3.1.2.3 Sous série 3 : J19
Résultats d'analyse de la surface des coquilles et du
contenu des oeufs embryonnés (tableaux 21 et 22)
Tableau 21 : Analyse de coquille des oeufs
embryonnés
|
|
pools
|
P1
|
P2
|
P3
|
P4
|
P5
|
P6
|
P7
|
P8
|
P9
|
P10
|
P11
|
P12
|
|
Couvoir
A
|
Enterobacter
|
Culture
négative
(___)
|
_
|
E. coli
|
E. coli
|
Klebsiella
|
_
|
_
|
E. coli
|
_
|
E. coli
|
_
|
|
Couvoir
B
|
E. coli
|
Culture
négative
(___)
|
Strept
D
|
_
|
_
|
_
|
E. coli
|
Citrobacter
|
_
|
_
|
E. coli
|
_
|
|
Couvoir
C
|
E. coli
|
Culture
négative
|
Klebsiella
|
Strept
D
|
E. coli
Proteus
|
_
|
_
|
E. coli
|
_
|
_
|
E. coli
|
_
|
(___)
Tableau 22 : Analyse du contenu des oeufs
embryonnés
|
|
Contenu des oeufs
embryonnés
|
Pools
|
P1
|
P2
|
P3
|
P4
|
P5
|
P6
|
|
Couvoir A
|
Culture négative(_)
|
_
|
_
|
_
|
E. coli
|
_
|
|
Couvoir B
|
Culture négative(_)
|
E. coli
|
_
|
_
|
_
|
_
|
|
Couvoir C
|
E. coli
|
Culture
négative(_)
|
_
|
_
|
_
|
_
|
3.1.2.4 Sous série 4 : J21
Résultats d'analyse du duvet et des organes de poussins
(tableaux 23 et 24)
Tableau 23 : Analyse du duvet de poussin
|
pools
|
P1
|
P2
|
P3
|
P4
|
P5
|
P6
|
P7
|
P8
|
P9
|
P10
|
P11
|
P12
|
|
Couvoir
A
|
E. coli
|
Culture
négative(_)
|
Klebsiella
|
_
|
E. coli
|
_
|
E. coli
|
Klebsiella
|
_
|
_
|
Enterobacter
|
_
|
|
Couvoir
B
|
E. coli
|
Culture
négative(_)
|
E. coli
|
_
|
Strep D
|
_
|
_
|
E. coli
|
_
|
_
|
_
|
_
|
|
Couvoir
C
|
E. coli
Strep
D
|
E. coli
Klebsiella
|
Culture
négative
(_)
|
_
|
E. coli
|
Proteus
|
_
|
Strep D
|
E. coli
|
_
|
E. coli
|
_
|
Tableau 25 : Paramètres zootechniques
% des mortalités embryonnaires /oeufs
non
éclos
% des mortalités embryonnaires
/oeufs
incubés
%des oeufs clairs /oeufs non éclos
%des oeufs clairs /oeufs incubés
Age de la poulette (semaine)
Poids du poussin (gramme)
Nombre d'oeufs incubés
Poids moyen (gramme)
Age des O.A.C (jours)
Taux d'éclosion (%)
paramètres Couvoir
A
Eclosion
13500 15690 22320
10975 12830 18240
35,8O 35,12 37,45
47,87
81,66
52,13
9,561 11,05 13,04
8,779 6,87 5,05
61,33
1-4 2-4 1-7
47
Couvoir
B
59,72
82,08
61,68
38,32
41
Couvoir
C
81,94
72,01
64,45
27,99
45
|
Tableau 24 :
|
Analyse d'organes de poussin
|
|
|
|
organes
des
poussins
|
Pools
|
P1
|
P2
|
P3
|
P4
|
P5
|
|
Couvoir A
|
Culture négative(_)
|
E. coli (foie)
|
_
|
_
|
_
|
|
Couvoir B
|
E. coli (foie)
|
Culture négative(j
|
_
|
_
|
_
|
|
Couvoir C
|
E. coli (foie)
|
Culture négative(j
|
_
|
_
|
_
|
P6
_
_
_
Tableau 26 : Identification des germes isolés dans le
couvoir A
|
COUVOIR A, SERIE A
|
|
Salmonelle
|
E. coli
|
Staph C -
|
Staph C +
|
Klebsiella
|
Proteus
|
Pseudomonas
|
Streptocoque
D
|
Enterobacter
|
Citrobacter
|
Microcoque
|
|
J0
|
0
|
38
|
2
|
0
|
2
|
5
|
5
|
0
|
6
|
0
|
0
|
|
J0'
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
|
J8
|
0
|
40
|
0
|
0
|
0
|
0
|
5
|
0
|
15
|
0
|
0
|
|
J8'
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
10
|
0
|
0
|
0
|
|
J19
|
0
|
30
|
5
|
0
|
5
|
0
|
0
|
10
|
0
|
15
|
5
|
|
J19'
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
5
|
0
|
10
|
0
|
0
|
0
|
|
J21
|
0
|
40
|
0
|
0
|
10
|
0
|
0
|
0
|
5
|
0
|
0
|
|
J21'
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
10
|
0
|
0
|
|
COUVOIR A, SERIE B
|
|
Salmonelle
|
E. coli
|
Staph
Coagulase -
|
Staph C +
|
Klebsiella
|
Proteus
|
Pseudomonas
|
Streptocoque
D
|
Enterobacter
|
Citrobacter
|
Microcoque
|
|
J0
|
0
|
25
|
2
|
0
|
2
|
0
|
0
|
2
|
7
|
0
|
0
|
|
J0'
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
|
J8
|
0
|
15
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
10
|
0
|
0
|
0
|
|
J8'
|
0
|
5
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
|
J19
|
0
|
20
|
0
|
0
|
5
|
0
|
0
|
0
|
5
|
0
|
0
|
|
J19'
|
0
|
5
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
|
J21
|
0
|
15
|
0
|
0
|
10
|
0
|
0
|
0
|
5
|
0
|
0
|
|
J21'
|
0
|
5
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
0
|
J0 , J8 , J19 pour la coquille des oeufs
J0', J8' , J19' pour le contenu des oeufs
J0 J8 J19 J21
J21 pour le duvet et J21' pour les organes de poussin
Figure 22 : N
Figure 23 : Compara
Par rapport aux norm
Tableau 27 : Identific
|
|
Salmonelle
|
E. coli
|
Staph C -
|
Staph
|
|
|
|
|
|
|
|
|
J0
|
0
|
48
|
0
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
J0'
|
0
|
0
|
0
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
J8
|
0
|
25
|
0
|
O
|
|
|
|
|
|
|
|
|
J8'
|
0
|
0
|
0
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
J19
|
0
|
40
|
0
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
J19'
|
0
|
10
|
0
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
J21
|
0
|
30
|
0
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
J21'
|
0
|
5
|
5
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Salmonelle
|
E. coli
|
Staph
Coagulase -
|
Staph
|
|
|
|
|
|
|
|
|
J0
|
0
|
19
|
0
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
J0'
|
0
|
0
|
0
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
J8
|
0
|
10
|
0
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
J8'
|
0
|
0
|
0
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
J19
|
0
|
15
|
0
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
J19'
|
0
|
5
|
0
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
J21
|
0
|
15
|
0
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
J21'
|
0
|
5
|
0
|
|
|
|
|
|
|
|
|
A
B
60
50
40
30
20
10
0
0 2
Taux de contamination
Séjour de l'oe uf de l'incubation à
l'éclosion(J0-J21)
4 6 8
Salmonelle
E. Coli
Staph Coagul Staph Coagul Klebsiella Proteus Pseudomona
Streptocoque Enterobacter Citrobacter Microcoque
20
18
16
14
Titre de I'axe
12
10
8
6
4
2
0
0 2
séjour de l'oeuf de
Figure 24 : Niveau de contamination couvoir B A:
série A B : série B
Figure 25 : compara Par rapport aux norm
Tableau 28 : Identific
|
|
Salmonelle
|
E. coli
|
Staph C -
|
Staph C
|
|
|
|
|
|
|
|
|
J0
|
15
|
32
|
0
|
0
|
|
|
|
|
|
|
|
|
JO'
|
0
|
0
|
0
|
0
|
|
|
|
|
|
|
|
|
J8
|
5
|
25
|
10
|
0
|
|
|
|
|
|
|
|
|
J8'
|
0
|
0
|
0
|
0
|
|
|
|
|
|
|
|
|
J19
|
5
|
30
|
0
|
5
|
|
|
|
|
|
|
|
|
J19'
|
0
|
10
|
0
|
0
|
|
|
|
|
|
|
|
|
J21
|
10
|
45
|
0
|
0
|
|
|
|
|
|
|
|
|
J21'
|
0
|
10
|
0
|
0
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Salmonelle
|
E. coli
|
Staph C -
|
Staph C
|
|
|
|
|
|
|
|
|
J0
|
0
|
19
|
2
|
0
|
|
|
|
|
|
|
|
|
J0'
|
0
|
0
|
0
|
0
|
|
|
|
|
|
|
|
|
J8
|
0
|
10
|
0
|
0
|
|
|
|
|
|
|
|
|
J8'
|
0
|
0
|
0
|
0
|
|
|
|
|
|
|
|
|
J19
|
0
|
20
|
0
|
0
|
|
|
|
|
|
|
|
|
J19'
|
0
|
5
|
0
|
0
|
|
|
|
|
|
|
|
|
J21
|
0
|
25
|
0
|
0
|
|
|
|
|
|
|
|
|
J21'
|
0
|
5
|
0
|
0
|
|
|
|
|
|
|
|
Taux de contamination
45
40
50
35
30
25
20
15
10
0
5
0 2
Séjour de l'oeuf de l
Figure 26 : N
Figure 27 : Compara Par rapport aux norm
Tableau 29 : Illustration
|
couvoir A
|
|
|
|
série A
|
sé
|
|
|
|
|
|
Age de la
poulette(s)
|
37
|
|
|
|
|
|
|
Age des O.A.C (j)
|
1 à 4
|
|
|
|
|
|
|
Poids moyen OAC
(gr)
|
57,66
|
|
|
|
|
|
|
Nombre O.A.C
incubés
|
13500
|
13
|
|
|
|
|
|
Nombre de
poussins éclos *
|
10850
|
10
|
|
|
|
|
|
Taux d'éclosion
(%)
|
80,73
|
|
|
|
|
|
|
Poids du poussin
(gr)
|
33,15
|
|
|
|
|
|
|
oeufs clairs (%)
|
9,032
|
|
|
|
|
|
|
mortalitéembryonnaire(%)
|
10,238
|
|
|
|
|
|
· les 60 oeufs embryonnés prél
· Tableau 30 : les normes de la souche ISA 15( selon
le guide de la souche
|
NORMES SOUCHE
|
NORMES SOUCHE
|
NORMES SOUCHE
|
|
Age de la poulette
|
37
|
47
|
27
|
41
|
37
|
45
|
|
Age des O.A.C (J)
|
<7
|
<7
|
<7
|
<7
|
<7
|
<7
|
|
Poids moyen OAC
|
61
|
65
|
51
|
62
|
61
|
65
|
|
Taux d'éclosion
|
88
|
85
|
75
|
87
|
88
|
86
|
commerciale)
Il ressort de cette étude lors de la
première série A que les OAC utilisés par les
couvoirs A, B et C possèdent un contenu dépourvu de toute
contamination bactérienne à l'arrivée car tous les
prélèvements se sont révélés négatifs
(tableau 8). Nos résultats signifient un bon état sanitaire des
reproductrices (absence de contamination pendant la formation de l'oeuf dans
les différents segments de l'oviducte). Ceci confirme le bon état
anatomo-pathologique de cet organe comme observé (figure 28)
après les autopsies effectuées sur des cadavres et poules en
production (absence de lésions). Ces résultats confirment le
rôle antimicrobien que jouent les différents constituants de
l'oeuf et en particulier l'albumen, ce qui est en accord avec Nakano
et al. (2003).
Figure 28 : Oviducte d'une poule âgée de 38
semaines (Originale)
Pour le contrôle de la désinfection des
différents secteurs et matériel des trois couvoirs, les
prélèvements de surface montrent une contamination
bactérienne assez importante à tous les niveaux (Tableau 6),
marquée par la domination d'Escherichia coli,
Streptocoque D, Klebsiella, Enterobacter et
Citrobacter pour le couvoir A (tableau 26),
d'Escherichia coli,
Pseudomonas, Streptocoque D et
Citrobacter pour le couvoir B (tableau 27)et
Escherichia coli et Salmonella enteritidis, Streptocoque D
et Klebsiella pour le couvoir C
(tableau 28).
La qualité microbiologique de la coquille des oeufs est
aussi médiocre avec persistance de
germes jusqu'à J21,
Escherichia coli, Streptocoque D et
Enterobacter au niveau des couvoirs
A et B et Escherichia coli, Streptocoque D
et Salmonella enteritidis au niveau du
couvoir C, contamination bactérienne accentuée par une ambiance
d'humidité et de température favorable aux conditions de
développement bactérien avec apparition de germes dans le contenu
des oeufs embryonnés à J8 et J19 pour le couvoir A (Streptocoque
D) et à J19 pour les couvoirs B et C (Escherichia coli)
par passage trans-coquillère comme relaté dans
diverses études (Bruce et Drysdale, 1994 ; Stoleson et Beissinger, 1999)
et où 70% des cas de passage bactérien au vitellus sont
opérés au delà de J7 (Cook et al.,
2003).
La contamination de l'oeuf par les microorganismes (y compris
les saprophytes) à partir de la coquille durant l'incubation est
à l'origine de l'élévation du taux des mortalités
embryonnaires comme démontré par Board et al.
en 1986 et Fasenko et al. en 2009. Nous
avons enregistré des taux de mortalités embryonnaires de 10,24 %
dans le couvoir A soit 53,12 % des oeufs non éclos, de 15,32 % dans le
couvoir B soit 53% des oeufs non éclos et un taux de 9,05 % dans le
couvoir C ce qui représente 61,1 % du lot d'oeuf qui n'ont pas
éclos. Dans tous les cas, elle représente plus que la
moitié des OAC qui n'ont pas donné naissance à un poussin
à J21 puisqu'on a relevé des taux d'oeufs clairs de 9,03% pour le
couvoir A, 13,59 % au couvoir B et 5,76 % pour le couvoir C.
Ce niveau de contamination est accentué au stade
éclosion par le nombre de prélèvements identifiés
positifs pour les couvoirs A et le couvoir C mais il l'est moins pour le
couvoir B qui opère d'une façon habituelle par une fumigation au
formol juste avant le transfert des oeufs ; ce niveau de contamination
entrainera une variation certaine dans les performances du poulet en
élevage d'autant plus que les analyses du duvet à
l'éclosion ont révélé une forte présence de
germes en particulier Escherichia coli pour les
couvoirs A et B et Escherichia coli et
Salmonella enteritidis pour le couvoir C, avec
contamination des organes de poussins dès le premier jour par
Escherichia coli dans le foie des poussins issus du
couvoir
B et du couvoir C, et Enterobacter au
niveau du même organes des poussins produits dans le couvoir A.
De plus l'identification d'une salmonelle responsable de
zoonose (Salmonella enteritidis) à J0 au
niveau de l'incubateur, et à J8 et J19 sur les coquilles d'oeuf et dans
le duvet à l'éclosion (J21) sera à l'origine d'une
contamination certaine du poussin dans le poulailler. En cas d'éventuel
contrôle des services vétérinaires officiels de la
circonscription, de graves conséquences seront liées à la
destruction de toute la bande, et à la durée du vide sanitaire
(réglementé à un mois par l'autorité
vétérinaire nationale comme précisé en annexe 4)
avec un risque épidémiologique d'une contamination des
reproductrices à partir du couvoir par les moyens de transport et/ou le
personnel étant donné qu'il s'agit du même
propriétaire. A l'issue de ces résultats nous avons
demandé aux différents couvoirs de renforcer les mesures de
désinfection à tous les niveaux et même aux niveaux des
réservoirs d'eau en particulier pour celle utilisée par le
couvoir A où on a enregistré un taux de contamination trop
élevé, vu que le couvoir utilise par souci d'économie
d'eau, un circuit fermé avec récupération d'une partie de
l'eau ; pour cela et avec notre aide auprès des services
d'hygiène de l'APC , le propriétaire a fait usage de la brique
à chaux pour réduire la charge bactérienne.
Au niveau du couvoir C, pour essayer d'éliminer les
salmonelles et suivant nos conseils, l'accouveur a tenté une
désinfection renforcée avec du formol à 37% et du
permanganate de potassium comme préconisé par l'O.I.E selon la
concentration B pour les machines.
A la seconde série B, nous avons pu
obtenir la confirmation de l'absence de contamination des différents
constituants internes de l'oeuf qui signe une formation et une évolution
aseptique de ce dernier dans le tractus génital de la poule
reproductrice du fait que la totalité des pools d'écouvillons
(12x5) pour chaque couvoir ont révélé des cultures
bactériennes négatives sur les deux milieux d'enrichissement (TSB
et RAPPAPORT).
Le contrôle de la désinfection des
différents secteurs des trois couvoirs, ainsi que le matériel
qu'ils utilisent, a fait ressortir une amélioration de la situation
hygiénique par une diminution du nombre d'identification de germes au
niveau des écouvillons et des chiffonnettes et une augmentation du
nombre des cultures négatives (diminution de la charge microbienne)
essentiellement au niveau des machines (incubateurs et éclosoirs) pour
les couvoirs A, B et C (figure 22, 24 et 26°et particulièrement, la
réussite de l'élimination de Salmonelle
enteritidis au niveau du couvoir C.
Pour les cultures bactériennes positives on note
toujours une contamination dominée par Escherichia
Coli, Enterobacter, Streptocoque D et
Klebsiella au niveau du couvoir A, avec contamination
du contenu des oeufs embryonnés par des Escherichia
coli dès J8 ; Escherichia coli,
Staphylococcus, Streptocoque D et
Enterobacter au niveau du couvoir B avec apparition
d'une contamination des embryons par Escherichia coli
à J19 ; et pour le couvoir C Escherichia coli, Streptocoque
D, Klebsiella et Proteus et une
contamination des embryons vers J19 .
| 
