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Méthodes d'études d'activité des antioxydants des plantes médicinales

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par Ouafa MEDJOUJDA
Université d'Agadir  - Licence 2012
  

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II.13.2- Dosage

Préparer le milieu gélosé, dans un bécher, en dissolvant 0,75 % (masse/volume) d'agar dans l'eau distillée; chauffer en agitant sur une plaque chauffante. Laisser refroidir jusqu'à environ 50C°, y transvaser 7,5 ml de solution acétonique de f3-carotène (1 mg/ml) et 1,5 ml de solution éthanolique d'acide linoléique (5 ìl ml d'éthanol); couler dans des boites pétri; laisser solidifier puis creuser des puits et y verser 30 ìl de chaque extrait (1mg/ml). Laisser incuber 3 à 4 h à 45C°. Dans des boites témoins les extraits sont remplacés par la quercétine et le BHT (témoins positifs), l'éthanol (témoins négatifs).

Une zone de rétention de la couleur orange autour des puits indique l'activité antioxydant des extraits (BELHATTAB, 2007).

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Chapitre II- Méthode d'étude d'activité des antioxydants des plantes médicinales

II.14- Pouvoir réducteur II.14.1- Dosage

Les mélanges réactionnels ont été préparés par addition de 2,5 ml du tampon phosphate (0,2 M, pH 6,6) à 2,5 ml de potassium Ferricyanide (1%) et les extraits de concentration variable (40-200 mg). Ces mélanges sont incubés dans un bain marie pendant 30 minutes à 50C°. Après refroidissement à température ambiante (28C°), 2,5 ml de TCA (acide trichloracétique) à 10% est ajouté à chaque mélange réactionnel, puis centrifugé à 2000 rpm pendant 10 min. Le surnageant (2,5 ml) a été déposé dans un tube à essai et mélangé avec 2,5 ml d'eau distillée et 0,5 ml FeCl3 (0,1%) et laissé réagir pendant 10 min à température ambiante. L'absorbance a été mesurée à 700 nm. L'acide ascorbique (ASA) a été utilisé comme standard (PISE et al., 2010).

II.15- Test de blanchiment de â-carotène couplé à l'auto-oxydation de l'acide linoléique

II.15.1- Principe

Le test de blanchiment de f3-carotène couplé à l'auto-oxydation de l'acide linoléique est une méthode rapide basée principalement sur le principe que l'acide linoléique, qui est un acide gras insaturé, s'oxyde par les espèces réactives de l'oxygène (ROS) produits par l'eau oxygénée. Le produit formé lancera l'oxydation du f3-carotène, ce qui conduira à la décoloration. Les antioxydants diminuent le degré de décoloration, qui est mesurée à 434 nm (NUR ALAM et al., 2013).

II.15.2- Dosage

La méthode de KABOUCHE et al. (2007) consiste à mélangé la f3-carotène (0,5 mg) dans 1 ml de chloroforme avec 25 uL de l'acide linoléique et 200 mg de Tween-80. Le chloroforme est évaporé à 40 C°. 100 ml d'eau distillée saturée avec de l'oxygène est lentement ajouté au résidu et la solution est agitée vigoureusement pour former une émulsion stable. 4 ml de ce mélange est ajouté dans les tubes à essai contenant 200 uL de l'échantillon préparé dans le méthanol à des concentrations finales (25, 50, 100, 200 et 400 ug / ml). Dès que la solution émulsionnée est ajouté aux tubes, l'absorbance de temps 0 est mesuré à 470 nm. Les tubes sont

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Chapitre II- Méthode d'étude d'activité des antioxydants des plantes médicinales

incubés pendant 2 heures à 50 C°. La vitamine C peut être utilisé comme standard (NUR ALAM et al., 2013).

L'activité antioxydant est calculée en pourcentage d'inhibition (I %) par rapport au témoin en utilisant l'équation suivante:

I% = [1- (As-As120)/ (Ac-Ac120)]

As : Absorbance initiale de l'échantillon.

As120: Absorbance de l'échantillon à 120 min.

Ac : Absorbance initiale du témoin négatif.

Ac120: Absorbance du témoins négatif à 120 min (NUR ALAM et al., 2013).

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