3.2.1.6- Fréquence des
lésions et des microorganismes en fonction du sexe
Ce travail a montré que les lésions d'organes
et les microorganismes identifiés ne varient pas en fonction du sexe
tant au niveau des lapins sous mères que ceux en engraissement.
Ces résultats pourraient s'expliquer par le
fait que les lapins des deux sexes sont élevés dans les
mêmes conditions et soumis au même régime alimentaire.
3.2.1.7- Relation entre le taux
de létalité et les microorganismes identifiés
La moyenne de létalité est
évaluée à 68% au cours de nos enquêtes et le
principal microorganisme identifié est Escherichia coli.
Ce taux pourrait s'expliquer par la présence d'une des
souches d'Escherichia coli qui entraînerait une mortalité
importante comme l'ont montré les travaux de CAMGUILHEM (1985). De
même LICOIS et al., cités par CAMGUILHEM (1985), ont
obtenu une mortalité de 100% avec une souche d'Escherichia coli
appartenant au sérogroupe O103 sur des lapins de six semaines
à la dose de 104 bactéries, sur des lapins indemnes de
coccidiose.
CONCLUSION ET
SUGGESTIONS
Cette étude a permis d'une part de faire un
état de lieu des élevages cunicoles du sud-Bénin et
d'autre part de mettre en évidence les pathologies du lapin par la
recherche des lésions ainsi que la mise en oeuvre des analyses
bactériologiques. La plupart des résultats ont été
comparés avec ceux des pays tempérés à cause de
l'inexistence d'une bibliographie propre aux espèces africaines. Au
terme de ces travaux, nous pouvons affirmer que :
ü le ballonnement d'abdomen et la diarrhée sont
les principaux signes dans les élevages cunicoles du
sud-Bénin.
ü les principales lésions chez les lapins morts de
maladies sont :
· la congestion du poumon, du foie, du l'intestin et de
la trachée ;
· la dégénérescence du
foie ;
· la présence de gaz dans le caecum à
contenu diarrhéique ;
· un contenu diarrhéique de l'intestin ;
· un écoulement sanguinolent.
ü les principaux microorganismes rencontrés dans
les élevages cunicoles sont Escherichia coli suivi dans une
moindre fréquence de Clostridium spp et d'Enterobacter
spp ;
ü pendant que les lésions d'organes et les
infections bactériennes varient en fonction de l'âge, ils ne le
sont pas en fonction du sexe.
En considérant les résultats de cette
étude, nous suggérons que :
v les travaux soient poursuivis pour identifier le
sérogroupe des souches d'Escherichia coli présentes dans
les élevages cunicoles du sud-Bénin ;
v les travaux soient menés sur des lapins indemnes de
coccidiose afin d'évaluer le rôle entéropathogène
des souches d' Escherichia
coli identifiées et de déterminer
à quelle dose ces derniers sont pathogènes ;
v après l'identification des souches pathogènes,
qu'un antibiogramme soit fait pour découvrir les antibiotiques les plus
efficaces pour lutter contre les souches d'Escherichia coli
afin de réduire la mortalité dans les élevages
cunicoles ;
v une bonne hygiène soit pratiquée dans les
élevages ;
v la transition alimentaire lors du sevrage soit faite de
façon progressive.
REFERENCES
BIBLIOGRAPHIQUES
1. Barone R., Pavaux C., Blin P.C., Cuq P.,
1973 : Atlas d'anatomie du lapin. Masson éditeur, Paris,
220 p.
2. BOUCHEUR S., NUOAILLE L., 2002 :
Maladies des lapins 2eme Edition France Agricole, Paris, 271p.
3. CAMGUILHEM R., 1985 : Isolement d'une
souche d'Escherichia coli (sérogroupe O103) responsable
d'entérite colibacillaire du lapin en engraissement. Mise en
évidence de son pouvoir pathogène. Revue Méd.,
136, 61- 67.
4. COLIN et LEBAS., 1985 : Le lapin dans
le monde Edition Association Française des Cuniculteurs, Paris,
287p.
5. COWAN and STEEL'S, 1993 : Manual for
the Identification of Medical Bacteria. Third Edition, Cambridge University
Press, 331p.
6. DJAGO Y., KPODEKON M., 2000 : Le
guide pratique de l'éleveur de lapin en Afrique de l'Ouest, Imprimerie
2000, Cotonou, 106p.
7. GRASSE P. P., 1949 : Traité de
Zoologie, Anatomie, Systématique, Biologie : Ed. Masson et Cie,
Paris, 979p.
8. GUIRAUD J., GALZY P., 1980 :
L'analyse microbiologique dans les industries alimentaires. Collection
Génie alimentaire. Editions Usine Nouvelle, Paris, 63p
9. HULET S., 2003 : Point sur la
filière cunicole au Bénin : perspectives d'avenir. Rapport
de troisième de graduation agronomie, Option agronomie des
régions chaudes, Ulg, 72p
10. KENOUKON C. 2005 : Répertoire
actualisé des éleveurs.-Cotonou : A. Be. C., 26p.
11. KPODEKON M., 1988(a) :
Hygiène et pathologies dans les élevages cunicoles du
Bénin. In: Proceeding of the 4thcongres of the word
Rabbit Science Association. Budapest, Hungary, October 10-14, 498-511
12. KPODEKON M., 1988(b) : Le point sur
l'élevage du lapin en République Populaire du Bénin.
Perspectives d'avenir. Cuni-Sciences 4, 15-26
13. KPODEKON M., TOMAGNIMENA P.,
1992 : Acceptabilité de la viande du lapin en
république du Bénin. Bulletin d'information du réseau
de recherche et développement cunicole en Afrique, 1, 15-21
14. LEBAS F., COUDERT P., ROUVIER R., ROCHAMBEAU
de H., 1984 : Le lapin élevage et pathologie, Edition
FAO, Rome, 298p
15. LEBAS F., COUDERT P., DE ROCHAMBEAU H.,
THÉBAULT R.G., 1996 : Le Lapin, Élevage et
Pathologie (nouvelle édition révisée). FAO éditeur,
Rome, 227 p
16. LICOIS D., COUDERT P., GUILLOT J. F., RENAULT
L. : Diarrhée expérimentale du lapin : Etude
de la pathologie due à des coccidioses intestinales (E.
intestinalis) et des E. Coli. IIIe journée de
la recherche cunicole INRA-ITAVI, 1982, Ed. ITAVI Paris, communication N°
27
17. PILET C., BOURDON L. J., TOMA B., MARCHAL N.,
BALBASTRE C., 1981 : Bactériologie médicale et
vétérinaire. DOIN Editeur -Paris, 437p
18. THOTO J. M., 2006 : Utilisation de
la Robénidine (cyscostat ND66G) en qualité d'addition
anticoccidien dans l'aliment : effet sur la croissance et le degré
d'infestation des lapins à l'engraissement. Thèse : Doctorat
en Médecine Vétérinaire, Dakar, 63p
19. YAOU B. I., 2007 : Microbiologie
générale Editeur : Imprimerie IPI, 168p
1. ANNEXES
Annexe 1 : Matériel
Pour l'autopsie, nous avons utilisé :
- une paire de ciseaux pour la dissection ;
- un plateau pour servir de bac d'autopsie ;
- les gants pour la protection des mains ;
- une pince anatomique pour servir de tenaille lors de la
dissection.
Pour l'identification des différentes bactéries
nous avons utilisé :
- Une paire de ciseaux et une pince anatomique
stérilisées pour les prélèvements d'organes
lésés ;
- des écouvillons stériles pour les
prélèvements liquides ;
- un bec Bunsen pour assurer un champ stérile lors des
manipulations microbiologiques ;
- un microscope photonique pour l'observation des
germes ;
- une étuve pour l'incubation des cultures ;
- un bain marie pour l'homogénéisation et la
stérilisation des milieux de culture ;
- un autoclave pour la stérilisation du
matériel et des milieux de culture ;
- une balance de précision pour les différents
pesés ;
- des boites de pétrie, des tubes à essaie, des
portoirs, des paniers, des pipettes Pasteur, des lames porte objets, une anse
de platine ;
- des milieux de culture (électifs et
sélectifs), d'isolement et d'identification des germes ;
- le papier acétate de plomb, l'huile de paraffine et
les réactifs comme H2O2, bandelette d'oxydase et
le milieu Kovac.
Annexe 2 : Fiches d'enquête et
d'autopsie
Fiche d'enquête
IDENTIFICATION DE L'ÉLEVAGE ET DES
ENQUÊTEURS
Nom du propriétaire :
Localité :
Date de l'enquête :
Nom des enquêteurs :
CARACTÉRISTIQUES DE
L'ÉLEVAGE
Type d'élevage
Au sol En cages Autres
(préciser)
Type de logement
Traditionnel Amélioré
Autres (préciser)
Effectifs
|
Effectif
|
Observations
|
Reproductrices
|
|
|
Reproducteurs
|
|
|
Lapereaux à l'engrais
|
|
|
Total
|
|
|
Hygiène et soins
Habitat et matériel
Le logement est-il bien entretenu ? Oui Non
Si oui, fréquence du nettoyage
..........................................
Le matériel est-il bien entretenu ? Oui
Non
Si oui, fréquence du nettoyage
..........................................
Les désinfectants sont-ils utilisés ? Oui
Non
Si oui, fréquence du nettoyage
..........................................
Animaux
Les animaux tombent-ils malades ? Oui
Non
Quels sont les signes souvent observés ?
...........................................
......................................................................................................
Quel est le nombre de malades en 2006 ?
........................................
Quel est le nombre de morts en 2006 ?
...........................................
En cas de maladies les soins sont-ils accordés aux
animaux ?
Oui Non
......................................................................................................
Si oui, quels sont les produits souvent utilisés ?
..............................
Compte rendu d'autopsie
N° d'enregistrement.............
PROPRIÉTAIRE
Adresse :
Boîte postale : Ville :
VÉTÉRINAIRE :
IDENTIFICATION DE L'ANIMAL :
COMMÉMORATIFS :
EXAMEN DE L'ANIMAL
- Etat général (embonpoint, téguments,
orifices et muqueuses) :
- Ouverture des grandes cavités :
Ø Appareil digestif :
Ø Appareil respiratoire :
Ø Appareil cardiovasculaire :
Ø Appareil uro-génital :
Ø S.R.H :
- Prélèvements effectués en vue des
examens
ü Bactériologiques :
.....................................................................
ü Histologiques :
.........................................................................
ü Parasitologiques :
.....................................................................
ü Toxicologiques :
.......................................................................
CONCLUSION :
Date : Signature :
Annexe 3 : Milieux
utilisés
- Gélose enrichie aux extraits de levure (G.E) :
c'est un milieu d'enrichissement et d'isolement qui permet la croissance des
diverses colonies pures.
- Bouillon enrichie aux extraits de levure (B.E) : c'est
un milieu de culture et d'isolement qui permet la croissance de divers
germes.
- Milieu de Chapman : c'est un milieu sélectif
pour la culture des staphylocoques mais exceptionnellement d'autres coques
peuvent y être cultivés sans virer le milieu.
- Milieu Mac-Conkey : c'est le milieu sélectif des
bacilles gram négatifs
Annexe 4 : Tests
d'identification
Coloration de Gram
C'est la coloration de base qui permet de distinguer les
bactéries Gram positifs en violet des bactéries Gram
négatifs en rose.
Technique
- Coloration par le violet de gentiane ;
· Recouvrir totalement la lame du violet de
gentiane ;
· Laisser agir le violet pendant une minute.
- Mordançage
· Rejeter ensuite le violet en l'entraînant avec
la solution de Lugol ;
· Laisser pendant quelques secondes puis le renouveler
(le temps de mordançage est égal à une minute).
- Décoloration par l'alcool
C'est le temps le plus délicat de la coloration.
Elle consiste à :
· laver la lame à l'alcool jusqu'à ce que
le liquide qui tombe de l'étalement devienne incolore ;
· Rincer immédiatement à l'eau.
- Recoloration à la fuchsine
· Couvrir la lame de la fuchsine pendant 10 à 20
secondes et rincer à l'eau.
- Séchage et observation
· Sécher délicatement la lame recouverte
avec du papier buvard
Recherche de mobilité
La mobilité est recherchée en
émulsionnant une colonie pure dans une goutte d'eau distillée
déposée sur une lame propre et recouverte d'une lamelle puis
observée au microscope à l'objectif 40.
Recherche de la catalase
La recherche de la catalase consiste à
émulsionner dans une goutte d'eau oxygénée
déposée sur une lame propre, une colonie pure. La réaction
est positive lorsqu'il y a effervescence.
Recherche de l'oxydase
L'oxydase est effectuée avec un stick sur lequel on
dépose une colonie pure. L'oxydase est positive lorsque le stick prend
une couleur bleu-violet.
ANNEXE 5 : Caractères
biochimiques de bacilles identifiés
Caractères biochimiques
|
BACILLES
|
[I]
|
[III]
|
[IV]
|
[V]
|
[VI]
|
[VII]
|
[VIII]
|
[IX]
|
[X]
|
[XI]
|
[XII]
|
[XIII]
|
[XV]
|
Gram
|
-
|
-
|
-
|
-
|
-
|
-
|
-
|
-
|
-
|
-
|
+
|
-
|
-
|
Mobilité
|
+ (-)
|
+
|
+
|
+
|
+ (-)
|
-
|
-
|
-
|
-
|
+
|
+
|
-
|
+ (-)
|
Catalase
|
+
|
+
|
+
|
+
|
+
|
+
|
+
|
+
|
+
|
+
|
+
|
+
|
+
|
Oxydase
|
-
|
-
|
-
|
+
|
-
|
-
|
+
|
+
|
+
|
-
|
-
|
-
|
-
|
Urée
|
-
|
+,-
|
d
|
+
|
+
|
-
|
-
|
-
|
+
|
-
|
-
|
+
|
-
|
Indole
|
+
|
-
|
-
|
nt
|
-
|
-
|
+
|
+
|
+
|
+
|
-
|
-
|
-
|
H2S
|
-
|
-
|
+,-
|
nt
|
+
|
-
|
-
|
-
|
-
|
+
|
nt
|
-
|
-
|
Glucose (gaz)
|
+
|
+
|
+
|
+
|
+
|
-
|
+
|
+
|
+
|
+
|
+
|
+
|
-
|
Lactose
|
+
|
v
|
d
|
-
|
-
|
-
|
-
|
+
|
+
|
-
|
nt
|
+
|
-
|
Maltose
|
+
|
+
|
+
|
-
|
-
|
-
|
-
|
+
|
+
|
+
|
nt
|
+
|
+
|
Mannitol
|
+
|
+
|
+
|
+
|
-
|
-
|
+
|
+
|
-
|
-
|
+
|
+
|
+
|
Sorbitol
|
+
|
+,-
|
+
|
nt
|
-
|
d
|
d
|
+
|
-
|
-
|
nt
|
+
|
-
|
Inositol
|
-
|
v
|
-
|
nt
|
-
|
nt
|
nt
|
nt
|
nt
|
nt
|
nt
|
nt
|
nt
|
|