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Régénération via l'organogénèse ou l'embryogénèse somatique chez le Scorpiurus

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par fatima zohra hamdani
Univeristé hassiba ben bouali de chlef - magister 2001
  

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2.3 Aptitude à l'organogenèse

2.3.1-Aptitude à la rhizogenèse

On désigne par le terme rhizogenèse , la différenciation de racines soit directement sur les explants soit indirectement sur les cals produits au cours de la phase d'induction. Ce processus morphologique est dépendant à la fois, de la composition hormonale du milieu, de l'explant et du génotype .

2.3.1.1-Influence de la composition hormonale du milieu

L'induction des racines semble être, elle aussi, sous grande influence des régulateurs de croissance. La nature des régulateurs, la dose avec laquelle sont employés, ainsi que le type de combinaison hormonale testée sont tous des modulateurs importants de la rhizogenèse. Parmi, toutes les gammes de concentration et les différentes combinaisons hormonales testées, seuls les milieux à AIA * KN et à des degrés moindre le 2,4-D * BA, permettent des résultats positifs (tableau 5). L'action de l'ANA quant à elle est quasiment nulle.

Il n'est pas inutile de rappeler , que la rhizogenèse n'a pu être induite sur les milieux qui contenaient des auxines ou des cytokinines seules.

Généralement les milieux dotés de 2,4-D permettent le développement de racines vigoureuses, de coloration jaunâtre . Sur ses mêmes racines peuvent se développer des racines secondaires (Planche 5:A). On note par ailleurs, que les racines produites en présence d'AIA paraissent moins vigoureuses et ne développent jamais de racines secondaires(Planche5:B).

Tableau 5 : Effet de la composition hormonale du milieu sur la rhizogenèse. Les résultats sont prélevés 3 semaines de la mise en culture des explants (quelque soit le génotype ou explant testé )

Composition hormonale du milieux

Pourcentage d'explant rhizogène

Nombre moyen de racine / explant

Longueur des racines (cm)

D0 ,1B0 ,1

D3B0,1

A20B0,1

A20K0,1

D0,1B3

D1B3

10.25

02.66

11.17

16.44

05.99

03.11

0.86 +0.81

0.45+0.69

0.39+0.49

1.42+1.66

0.83+0.94

0.34+0.515

0.5 -4 .0

1.0 -3.5

1.0 -4.0

4.0 - 8.0

0.5 -4.0

0.5 -2.0

2 ** = 23.89 , DDL = 5 (Significative au seuil de confiance = 0.01)

A

B

Planche 5: Différents types de racines développées dans des milieux d'induction (MS) contenant respectivement: 0,1mg/l de 2,4-D et 0,1mg/l de BA sur explants hypocotyles (A) ; 20mg/l d'AIA et 0,1 mg/l de BA sur explants cotylédons (B).

A1

A2

B

Planche 6: Développement de racine, directement sur explant d'hypocotyle (A1), et de cotylédon (A2) sur milieu D0,1B0,1 ( milieu pourvu de 0,1 mg/l de 2,4-D et de 0,1 mg/l de BA) et indirectement sur explant de racine (B), sur milieu A20B0,1 ( milieu pourvu de 20mg/l d'AIA et 0,1 mg/l de BA).

2.3.1.2-Influence de l'explant 

Les résultats, de notre expérience (tableau 6), montrent, de manière inéluctable que la nature des explants influence également la rhizogenèse. C'est toujours les hypocotyles qui prennent le dessus sur le reste des explants en exprimant les meilleures potentialités.

On signale par ailleurs, que les racines formées à partir d'hypocotyles paraissent plus vigoureuses et plus nombreuses comparativement à celles issues de cotylédons. On note également qu'avec certains types d'explants comme les cotylédons ou les hypocotyles l'induction de la rhizogenèse peut être à la fois directe ou indirecte (Planche6: A1 et A2), par contre avec d'autres explants comme les racines, elle est exclusivement indirecte(Planche 6 B)

Tableau 6 : Variation des aptitudes rhizogène des explants. Les résultats sont prélevés 3 semaines après la mise en culture des explants (quelque soit le milieu ou le génotype testé)

Nature de

l'explants

Pourcentage d'explant rhizogène

Nombre moyen de racines / explant

Longueur des racines (cm)

Hypocotyle

Cotylédon

Racine

10.59

04.88

10.08

1.88 + 0.43

1.72 + 0.53

1.95 + 0.2

0.5 - 8.0

1.0 - 5.0

0.5 - 4.0

2 *** = 26.35 , DDL = 2 (Significative au seuil de confiance = 0.001)

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