Liste des
Abréviations
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MS
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: MURASHIGE et SKOOG, (1962)
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ABA
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: Acide abscissique
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AIA ou A
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: Acide - indolylacétique
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ANA ou N
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: Acide naphtalène acétique
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2,4-D ou D
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: Acide 2,4- dichlorophénoxyacétique
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BA ou B
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: 6 - benzyladénine
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Kin ou K
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: Kinétine ou 6 - furfuryladénine
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GA3 ou G
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: Gibberélline
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M.A.D
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: Matière azotée digestible
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M.A.T
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:Matières Azotées Totales
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M.M
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: Matières Minérales ;
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C.U.D
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:Coefficient de Digestibilité de la matière
organique
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C.B
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: Cellulose Brute
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U.F
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: Unité Fourragère.
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V6,V12,V13
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: Scorpiurus vermiculatus ( génotypes)
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B1, B6, B8
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: Scorpiurus muricatus.ssp subvillosus (
génotypes)
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L26 , L3
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: Scorpiurus muricatus.ssp sulcatus (
génotypes)
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Emb
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: Embryogenèse somatique
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Org
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: Organogenèse
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mg/l
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: milligramme par litre
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H
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: Hypocotyle
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C
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: Cotylédon
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R
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: Racine
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Liste des
planches
Planche 1:( A) - Jeune plantule de
Scorpiurus de 20 jours .(B) -Plante adulte de Scorpiurus
au stade floraison .(C) - Fruit en gousse de Scorpiurus
muricatus. (D) - Graine de Scorpiurus muricatus.. (E )- Fruit
en gousse de Scorpiurus vermiculatus .(F) - Graine de Scorpiurus
vermiculatus
Planche 2: -Coupes histologiques
longitudinales réalisées au niveau de bourgeons
néoformés, obtenus par voie directe et indirecte.
Planche 3:-Coupes histologiques
longitudinales réalisées au niveau d'embryons somatiques.
Planche 4: Différents types de cals
obtenus après 20 jours de culture .
Planche 5: Différents types de
racines développées .
Planche 6: Développement de racines
par voie directe et indirecte
Planche 7: Néoformation de bourgeons
par voie directe et indirecte
Planche 8: Bourgeons néoformés
obtenus, sur milieux B3D0,1 (contenant 30 g/l du maltose ( A) et du
glucose ( B)), avec des explants d'hypocotyles.
Planche 9: Formation et développement
des embryons somatiques
Planche 10:. Principales malformations
morphologiques que présentent les embryons somatiques .
Planche 11: Opération d'enracinement
des bourgeons et transfert des plantules en pots .
Planche 12: Germination d'embryons somatique,
après 2 semaines de culture sur milieu B0,1G0,1( 0,1 mg/l de BA et
0,1mg/l de GA3)
CHAPITRE I GENERALITE SUR LES CULTURES
IN-VITRO
1 - APERCU HISTORIQUE SUR LES TECHNIQUES DE CULTURES
IN-VITRO.
2- La MICROPROPAGATION
2.1- Cultures de méristèmes
2.2- Organogenèse
2.2.1-Caulogenèse
2.2.1.1 Définition
2.2.1.2 Origine des bourgeons
2.2.2 Rhizogenèse
2.2.2.1 Définition
2.2.2.2 Origine des racines néoformées
2. 3 Embryogénèse somatique
2.3.1Définition
2.3.2 Origine et développement des embryons
somatiques
2.3.3 Intérêt de l'embryogenèse
somatique
2.4 Facteurs de la
régénérabilité
2.4.1 Effet de l'explant
2.4.2 Influence du génotype
2.4.3 Influence du milieu de culture
2.4.3.1 Les régulateurs de croissance
2.4.3.2 Influence de la source carbonée
3 LES LEGUMINEUSES ET LA MICROPROPAGATION
3.1 Intérêt de la famille des
Légumineuses
3.2 Micropropagation des Légumineuses
in-vitro
4 -OBJECTIF DU TRAVAIL
CHAPITRE II MATERIELS
et METHODES
1 MATERIEL VEGETAL
1.1 Présentation de l'espèce
1.1.1 Classification de l'espèce
1.1.2 Les caractéristiques biologiques de la
plant
1.1.3 Répartition géographique
2-CONDITION DE CULTURE DES PLANTES MERE ET OBTENTION
DES EXPLANTS.
2.1 Origine des graines
2.2 Scarification des graines
2.3 Explants provenant de jeunes plantes
cultivées in- vitro
2.4 Explants provenant de plantes cultivées en
pots
3-TECHNIQUE DE CULTURE IN-VITRO
3.1 Milieux de cultures
3.2 Préparation des explants et ensemencement
3.3 Conduite des cultures
4-EVALUATION DES RESULTATS
4.1 Cas de la callogénèse
4.2 Cas de structures embryogènes ou
organogènes
4.3 Analyse statistique
5- ETUDE HISTOLOGIQUE
CHAPITRE III
RESULTATS
1-ESSAI PRELIMINAIRES
1.1 Introduction
1.2 Résultats obtenus
1.3 Coupe histologiques
1.3.1 Coupe de bourgeons
1.2.3Coupe des embryons somatiques
1.4 Conclusion
2-APTITUDE A LA CALLOGENESE
2.1 Influence des régulateurs de croissance
2.1.1 Action des auxines seules ou
combinées
2.1.2 Action des cytokinines seules ou
combinées.
2.2 Influence de l'explant
2.3Influence du génotype
2.4 Conclusion
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