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Le niveau de contamination microbienne du couvoir et son influence sur la qualité du poussin dans la filière chair

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par kadi DIAFI
Ecole Nationale Supérieure Vétérinaire d'Alger - These de magistère 2010
  

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A/Protocole de désinfection

Couvoir A

La désinfection est réalisée après un léger nettoyage à sec (balayage à sec : erreur) à l'aide d'un ammonium quaternaire (produit cité dans le tableau 5) à la dose de 1 ml/litre d'eau (une eau issue de la bâche à eau utilisée pour le circuit des machines).

Le procédé utilisé est une aspersion sur toutes les surfaces des salles, des machines et du matériel à l'aide d'un pulvérisateur manuel.

Le rinçage est effectué avec la même eau par un tuyau de 15-20 mn de diamètre.

Aucun rangement du matériel n'est effectué au préalable. Les tenues vestimentaires et la marche en avant ne sont pas respectées.

Couvoir B

Apres un nettoyage superficiel, la désinfection est effectuée par nébulisation (utilisation

d'un pulvérisateur manuel) d'un produit cité dans le tableau 5 et qui est la combinaison d'un ammonium quaternaire et d'un aldéhyde glutarique et formique à la dose de 1.5 ml/m3 sur l'ensemble des surfaces.

Après une durée de contact de 1-2 heures (le fabriquant préconise 3 heures), l'ensemble est rincé avec une eau provenant d'un abattoir avicole de voisinage et appartenant à la même entreprise (risque de contamination).

Le rangement du matériel est certes effectué mais d'une manière non ordonnée et l'utilisation des tenues vestimentaires distinguant les deux secteurs (propre et souillé) ainsi que la marche en avant ne sont pas des habitudes du personnel.

Couvoir C

Au préalable un rangement insuffisant du matériel ayant servi à l'incubation et à l'éclosion. L'entrecroisement du matériel et du personnel entre les deux secteurs (secteur propresecteur souillé) est très habituel faisant fi à un des principes fondamentaux de la gestion du couvoir, qui est la marche en avant.

Le nettoyage se fait à l'aide d'une eau de source au sceau et au tuyau.

La désinfection est pratiquée, à l'issue du nettoyage à l'eau, au moyen d'un pulvérisateur manuel en utilisant un produit iodé indiqué dans le tableau 5 à la dose 1.5 l/litre d'eau.

Le rinçage est la dernière étape du protocole.

B/Prélèvements effectués

· Les premiers prélèvements ont été effectués avant la mise en place des OAC dans les machines (J0) et intéressent le degré de l'efficacité de la désinfection opérée habituellement par l'accouveur. Un échantillon d'OAC (n=60) est pris au hasard à la réception pour analyser leur contenu.

· A J8 de l'incubation, un second prélèvement concernant la surface des coquilles et le contenu des oeufs embryonnés fut effectué pour lire l'évolution de la contamination.

· Un troisième prélèvement (la surface des coquilles + contenu des oeufs) est effectué à la date du transfert à J19 après manipulation des oeufs par le personnel afin de lire l'évolution de la contamination.

· Un dernier prélèvement est réalisé à la sortie du poussin à l'éclosion effectué à partir du duvet des poussins éclos à J21 avec un échantillon de poussins (n=30) pour analyser certain organes (TD -foie- coeur-poumons).

Nous avons ainsi pu suivre le développement embryonnaire jusqu'à l'éclosion (figure 21).

2.2.1.2 Série B

Après l'obtention des résultats de la première série, on a sollicité les différents accouveurs à renforcer les mesures de désinfection et d'hygiène avec des recommandations précises.

A/Protocole de désinfection recommandéS'agissant d'une étude d'évaluation de la désinfection pratiquée par les couvoirs et non pas

une étude comparative entre les produits désinfectants utilisés, nous avons préconisé :

- Aux 3 couvoirs (A, B et C) d'utiliser les mêmes types de désinfectant en respectant scrupuleusement les dosages préconisés par les fabriquant.

- Pour le couvoir C (présence de salmonelles), de réaliser une seconde désinfection selon le protocole de désinfection des oeufs et du matériel préconisé par OIE dans le code sanitaire pour les animaux terrestres (2008) à l'aide d'une association de 53 ml de formol (solution à 37.5%) et de 35 g de KMnO4 /m3.

- En se basant sur les directives de la direction des services vétérinaires (Note 747/14 du 8 novembre 2004, nous avons insisté auprès des accouveurs pour effectuer le protocole suivant :

- Enlèvement de la totalité des déchets aussi rapidement que possible et après chaque opération dans le couvoir.

- Rangement de la totalité du matériel avant son nettoyage et sa désinfection. - Balayage humide pour éviter la dispersion du duvet.

- Lavage à l'eau avec utilisation de détergeant pour améliorer la qualité du lavage

et préparer convenablement les surfaces à une désinfection efficace.

- Désinfection des bâches à eau à l'aide de l'eau de javel commerciale.

- Réaliser une désinfection par pulvérisation des mêmes produits sur des

surfaces

propres et selon les dosages recommandés pour les différents produits :

1. couvoir A : 15 ml/litre d'eau

2. couvoir B : 1.5 ml/m3 pendant 3 heures de contacte

3. couvoir C : 1.7 ml/litre d'eau

- Réaliser une seconde désinfection pour le couvoir C (formol +KMnO4) - Rincer et laisser sécher.

NB : Malgré notre insistance, nous n'avons enregistré aucun changement des habitudes du personnel pour la marche en avant et le respect des secteurs ainsi que pour les tenues vestimentaires.

NB/Les paramètres de température et d'hygrométrie sont restés inchangés le long de l'étude.

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"Qui vit sans folie n'est pas si sage qu'il croit."   La Rochefoucault