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Contribution à l'étude du système lipolytique d'un animal primitif marin: le crabe vert

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par Heykel Trabelsi
Ecole nationale d'ingénieurs de Sfax Tunisie - Diplome national d'ingénieur en biologie 2006
  

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Conclusion et Perspectives

Dans ce présent travail, la purification et la caractérisation biochimique partielle de la lipase digestive de crabe (LDC) ont été réalisées.

Nos résultats montrent que :

§ La masse moléculaire de la LDC est de 65 kDa.

§ Contrairement à toutes les lipases de règne animal, La température optimale d'action de la LDC est de 60°C.

§ La cinétique d'hydrolyse d'une émulsion d'huile d'olive ou de tributyrine reste linéaire pendant 20 min.

§ L'activité spécifique de la LDC purifiée est de 500 UI/mg sur la tributyrine comme substrat.

§ Le calcium n'est pas nécessaire pour déclencher l'activité lipasique.

§ La LDC est stable et active entre pH 6 et 10 après 30 min d'incubation à température ambiante.

§ Le NaDC inhibe la LDC à une concentration de 2 mM.

§ Les résultats d'immunoréactivité de la LDC vis-à-vis de deux types d'anticorps polyclonaux anti-SDL et anti-TPL suggèrent que la LDC ne présente pas d'homologie structurale ni avec les lipases pancréatiques classiques ni avec une lipase d'un arthropode terrestre (le scorpion).

Perspectives :

§ Déterminer la séquence primaire de la LDC.

§ Déterminer et exprimer le gène qui code pour la LDC.

§ Modéliser ou cristalliser la LDC pour déterminer la structure tertiaire.

§ Approfondir l'étude immunologique.

Sommaire

Introduction 1

Etude bibliographique

I- Les enzymes lipolytiques 2

1- Introduction 2

2- Cinétique enzymatique de la lipolyse 2

II- Les lipases du monde marin 4

III- Les Crabes 5

1- Position systématique 5

2- Morphologie des crabes 5

3- Système digestif 5

Matériel & Méthodes

I- Matériel 7

1- Réactifs 7

2- Animaux 7

3- Protéines 7

4- Supports chromatographiques 7

5- Appareillage 7

II- Méthodes 7

1- Dosage de l'activité lipolytique 7

2- Dosage de l'activité phospholipasique 8

3- Détermination de la concentration en protéines 8

4- Effet de la température sur l'activité lipasique 8

5- Effet du pH sur l'activité lipasique 8

6- Stabilité de la lipase de crabe en fonction de la température 8

7- Stabilité de la lipase de crabe en fonction du pH 8

8- Effet des ions calcium 9

9- Effet du détergent naturel sur l'activité lipasique 9

10- Dosage des sels biliaires dans l'hépatopancréas de crabe 9

a) Préparation de la solution (Enzyme/NAD+) au moment de l'expérience 9

b) Dosage des échantillons 9

11-Analyse des protéines par électrophorèse et immunorévélation 9

Résultats & Discussion

I- Niveau des enzymes lipolytiques et de la colipase dans l'hépatopancréas de crabe vert 10

1- Mise au point des activités lipasique et phospholipasique dans l'homogénat 10

2- Recherche de la colipase dans l'hépatopancréas de crabe 10

3- Recherche de sels biliaires dans l'hépatopancréas de crabe 11

II. Purification de la lipase de crabe vert 11

Préparation de l'homogénat 11

1- Traitement à 60°C 11

2- Chromatographie échangeuse d'anions 11

3- Précipitation au sulfate d'ammonium 11

4- Filtration sur Séphacryl S-200 12

5- Chromatographie échangeuse d'anions : Mono Q-Sépharose 12

6- Electrophorèse sur gel de polyacrylamide en présence de SDS 13

7- Bilan de purification de la lipase de crabe vert 14

III- Caractérisation biochimique de la lipase digestive de crabe vert 14

1- Activité lipasique en fonction de la température 14

2- Cinétique d'hydrolyse de la tributyrine et de l'huile d'olive 15

3- Effet du pH sur l'activité de la LDC 15

4- Stabilité de la LDC en fonction de pH 16

5- Effet de la température sur l'activité de la LDC 16

6- Stabilité de la LDC en fonction de la température 17

7- Effet de calcium sur l'activité de la LDC 17

8- Effet d'un composé amphipatique sur l'activité de la LDC 18

9- Immunoréactivité des anticorps polyclonaux anti-SDL et anti-TPL avec la LDC 19

Conclusion & Perspectives

B

Bauchau A., la vie des crabes, édition Paul Le Chevalier (1966) 142-143

Beaumont A., Cassier P., travaux pratiques de biologie animale, zoologie, embryologie, histologie (1973), édition Bordas ; Paris (1991) 472-473.

Bradford M.M., A rapid and sensitive method for the quantitation of quantities of protein utilising the principle of protein-drye binding, Anal. Biochem. 72 (1976) 248-254.

Brady L., Brzozowski A.M., Derewenda Z.S., Dodson E., Dodson G.G., Tolley S., Turkenburg J.P., Christiansen L., Huge-Jensen B., Norskov L., Thim L., Menge U., A serine protease triad forms the catalytic centre of a triacylglycerol lipase, Nature 343 (1990) 767-770.

Brockerhoff H., Hoyle R.J., Hwrang P.C. Digestive enzymes of the American lobster, Homarus americanus. J.Fish Res. Board Can. 27 (1970) 1357-1370.

D

Dejerli N., Akpinar MA., Partial purification of intestinal triglyceride lipase from Cyprinion Hechel and effect of pH on enzyme activity, Turk journal 26 (2002) 133-143.

Desnuelle P., Sarda L., Ailhaud G., Inhibition de la lipase pancréatique par le diéthyl-p-nitrophényl phosphate en émulsion, Biochim. Biophys. Acta 37 (1960) 570-571.

F

Ferrato F., Carrière F., Sarda L., Verger R., A critical reevaluation of the phenomenon of interfacial activation, Methods Enzymol. 286 (1997) 327-347.

G

Gandhi N.N., Applications of lipase, J. Am. Oil Chem. Soc. 74 (1997) 621-634.

Gargouri Y., Julien R., Bois A. G., Verger R., Sarda L., Studies on the detergent inhibition of pancreatic lipase activity, J. Lipid Res. 24 (1983) 1336-1342.

Gargouri Y., Julien R., Sugihara A., Verger R., Sarda L. Inhibition of pancreatic and microbial lipases by proteins, Biochem. Biophys. Acta 795 (1984a) 326-331.

Gargouri Y., Julien R., Pièroni G., Verger R., Sarda L. Studies on the inhibition of pancreatic and microbial lipases by soybean proteins, J. Lipid Res. 25 (1984b) 1214-1221.

Gargouri Y., Pièroni G., Rivière C., Sarda L., Verger R., Inhibition of lipases by proteins: a binding study using dicaprin monolayers, Biochemistry 25 (1985) 1733-1738.

Gargouri Y., Piéroni G., Rivière C., Saunière J.F., Lowe P.A., Sarda L., Verger R., Kinetic assay of human gastric lipase with short and long chain triacylglycerol emulsion, Gastroenterology 91 (1986) 919-925.

Gjellesvik D.R., Lambardo D., Walther B.T., Pancreatic bile salt dependent lipase from Cod (Gadus morhua): Purification and proprieties, Biochem. Biophys. Acta 1124 (1992) 123-134.

L

Laemmli U.K., Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4, Nature 227 (1970) 680-685.

P

Patton J.S., Nevenzel J.C., Fat digestion in fish, Journal of American Oil chemist society 51(1974) 112-117.

R

Ransac S., Rivière C., Soulié J.M., Gancet C., Verger R., De Haas G.H. Competitive inhibition of lipolytic enzymes I. A kinetic model applicable to water insoluble competitive inhibitors, Biochem. Biophys. Acta 1043 (1990) 57-66.

S

Sarda L., Desnuelle P., Action de la lipase pancréatique sur les esters en émulsion, Biochim. Biophys. Acta 30 (1958) 513-521.

Sayari A., Verger R., Gargouri Y., Comparative kinetic studies of two staphylococcal lipases using the monomolecular film technique, J. Biochem. Mol. Biol. 34 (2001) 457-462.

T

Tocher D.R., Sergent J., Studies on triacylglycerol, wax and sterol ester hydrolase in the intestinal caeca of rain boutrout (Salmogairdnerii) fed diet rich in triacylglycerol and wax ester,Comparative Biochemistry and Physiology 77B (1984) 561-571.

Taipa M.A., Aires-Barros M.R., Cabral J.M.S., Purification of lipases, J. Biotechnol. 26 (1992) 111-142.

U

Uppenberg J., Hansen M.T., Patkar S., Jones T.A., Sequence, crystal structure determination and refinement of two crystal forms of lipase Bfrom Candida antarctica, Structure 2 (1994) 293-308.

V

Verger R., de Haas G.H., Enzyme reactions in a menbrane model. 1. New technique in monolayers, Chem. Phys. Lipids 10 (1973) 127-136.

Verger R., hydrolases et dépolymerases, enzymes d'intérêt industriel, (Mouranche A. et Coste C., eds) Gauthirr-Villars (1985) 313-329.

W

Winkler F.K., d'Arcy A., Hunziker W., Structure of human pancreatic lipase, Nature 343 (1990) 771-774.

Z

Zouari N., Miled N., Cherif S., Mejdoub M., Gargouri Y., Purification and characterization of a novel lipase from the digestive glands of a primitive animal: The scorpion, Biochem. Biophys. Acta. 1726 (2005) 67-74.

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"La première panacée d'une nation mal gouvernée est l'inflation monétaire, la seconde, c'est la guerre. Tous deux apportent une prospérité temporaire, tous deux apportent une ruine permanente. Mais tous deux sont le refuge des opportunistes politiques et économiques"   Hemingway