Bioconversion enzymatique des composés phénoliques des effluents issus de l'extraction d'huile d'olive: une voie prometteuse de valorisation par la production de l'hydroxytyrosol naturel

• IV- Changement de la composition en polyphénols durant la maturation de l'olive
  
• I-5-1 Milieu liquide à base de son de blé pour la production de f3-glucosidase à
  
• I-10 Chromatographie phase gazeuse couplée à la spectrométrie de masse (CPG-
  
• I- Optimisation des conditions et de la composition du milieu de culture pour la
  
• II- Résultats de la fermentation d'Aspergillus niger sur le milieu de culture
  
• II-1 Enzymes produites durant la fermentation d'Aspergillus niger dans le son
  
• I. Mise en évidence de la bioconversion des margines moyennant une réaction
  
• II. Les enzymes fongiques : un outil puissant pour enrichir les margines en
  
• III- Optimisation du process de la bioconversion des composés phénoliques des
  
• III-5 Relation entre la production de l'hydroxytyrosol et la concentration de f3-
  
• II- Essai de bioconversion des deux types de margine par l'enzyme conservée131
  
• II-3 Bioconversion des margines issue de huilerie classique super press à l'échelle
  
• IV- Essai de la bioconversion des composés phénoliques des margines à grande
  

• Introduction générale
  
• Introduction générale
  
• Introduction générale
  
• Introduction générale
  
  • I- L'olivier
    
  • I-1 Origine et Histoire
    
  • I-2 L'olivier en Tunisie
    
  • I-3 Botanique de l'olivier
    
  • J-4 Culture de l'olivier
    
  • I-5 Intérêt économique en Tunisie
    
  • J-6 Les olives
    
  • II- Technologie d'extraction d'huile d'olives
    
  • II-1 Système discontinue de presse (dit classique)
    
  • II-2 Système continue à trois phases
    
  • II-3 Système continue à deux phases (dit économique)
    
  • I- Introduction
    
  • II- Composition des margines
    
  • II-1 Produits phénoliques simples
    
  • II-2 Oleuropéine
    
  • II-2-1 Historique
    
  • II-2-2 Structure chimique de l'oleuropéine
    
  • II-2-3 Activité biologique de l'oleuropéine
    
  • II-2-4 Mode d'action de l'oleuropéine
    
  • II-3 Hydroxytyrosol
    
  • II-3-1 Propriétés de l'hydroxytyrosol
    
  • II-3-2 Synthèse de l'hydroxytyrosol
    
  • II-3-2 Les métabolites de l'hydroxytyrosol
    
  • III- Procédés de dépollution des margines
    
  • IV. Différentes approches de valorisation des margines
    
  • IV-1 Utilisation des margines comme fertilisant
    
  • IV-2 Production des protéines unicellulaires
    
  • IV-3 Production des enzymes pectinolytiques
    
  • IV-4 Application des margines dans la fabrication du compost
    
  • IV-5 Utilisation des margines comme source naturelle d'antioxydants
    
  • I- Introduction
    
  • II- Les différents types de polyphénols
    
  • II-1 Les acides phénoliques
    
  • II-2 Les flavonoïdes
    
  • II-3 Les tannins
    
  • II-4 La lignine
    
  • III- Les polyphénols de l'olivier
    
  • V- 1 Vis-à-vis des plantes.
    
  • V-2 Vis-à-vis de l'homme
    
  • II.2. Nature des radicaux libres
    
  • II.2.1. Les espèces réactives dérivées de l'oxygène
    
  • II-2-1-1 L'anion superoxyde : ·O2 -
    
  • II-2-1-2 Le peroxyde: H2O2
    
  • II-2-1-3 L'hydroxyle : OH
    
  • III- Dommages causés par les radicaux libres
    
  • III-1 Action sur l'ADN
    
  • III-2 Action sur les lipides
    
  • III-3 Action sur les glucides
    
  • III-3 Action sur les protéines
    
  • IV- Mécanisme d'action des antioxydants
    
  • V- Différents types d'antioxydants
    
  • V-1 Antioxydants synthétiques
    
  • V-2 Antioxydants naturels employés
    
  • VI- Sources végétales d'antioxydants
    
  • II-1 Synthèse microbiologique
    
  • II-2 Synthèse enzymatique
    
  • III- Bioconversion des margines en produits utiles
    
  • IV-Bioconversion des composés phénoliques
    
  • III-2 Bioconversion de l'oleuropéine des olives
    
  • III-3 Bioconversion de l'oleuropéine d'huile d'olive
    
  • III-5 Bioconversion des composés phénoliques de blé
    
  • III-6 Bioconversion des composés phénoliques du vin
    
  • III- Aspergillus niger
    
  • III-1 Quelques enzymes produites par Aspergillus niger
    
  • III-1-1 Estérase
    
  • III-2 Applications biotechnologiques des estérases et de Ji-Glucosidase
    
  • III-2-1Applications biotechnologiques des estérases
    
  • III-3 Immobilisation des Ji-Glucosidases
    
  • I- Procédés de séparation membranaire
    
• Conclusion
  
  • I- Matériel
    
  • I-1 Appareillages
    
  • I-2 Produits chimiques
    
  • I-3 Substrats biologiques
    
  • I-3-1 Margine
    
  • I-4 Origine des champignons utilisés
    
  • I-5 Milieux de culture
    
  • I-6 Conditions opératoires de la préculture d'A. niger
    
  • I-7 Conditions opératoires de la culture d'A. niger
    
  • I-8 Chromatographie liquide à haute performance (CLHP)
    
  • J-10 Chromatographie phase gazeuse couplée à la spectrométrie de masse (CPG-SM)
    
  • II- Méthodes
    
  • II-1 Techniques de culture de champignons
    
  • II-1-1 Extraction des spores et culture de la souche Aspergillus niger
    
  • II-2 Techniques de récupération des enzymes et dosage de leurs activités
    
  • II-2-1 Préparation des enzymes
    
  • II-3 Bioconversion de la margine
    
  • II-3-1 Méthode de la biotransformation
    
  • II-3-7 Bioconversion à grande échelle
    
  • II-4 Techniques séparatives membranaires
    
  • II-4-1 Procédés de séparation
    
  • II-5 Concentration par évaporation
    
  • II-6 Extraction des composés phénoliques à partir des margines
    
  • II-7 Analyse par Chromatographie liquide à haute performance : CLHP
    
  • II-8 Détermination de l'activité antiradicalaire
    
  • II-8-1 Principe de la méthode
    
  • II-8-2 Mode opératoire
    
  • II-9 Analyse des protéines
    
  • II-10 Détermination de la concentration des sucres réducteurs
    
  • II-11 Détermination de la concentration des ortho-diphénols totaux
    
  • II-12 Analyse par GC-MS
    
  • II-13 Détermination de la matière sèche (MS)
    
  • II-14 Dosage de glucose (méthode enzymatique GOD-PAP)
    
  • II-15 Estimation de la concentration en polyphénols des margines
    
  • II-16 Immobilisation en Alginate de â-glucosidase
    
  • III. Caractérisation des margines brutes
    
  • I-Introduction
    
• Chapitre I :
  
  • I-1 Optimisation des paramètres du procès de production de Ji-glucosidase
    
  • I-1-1 Effet du pH initial et de la température
    
  • I-1-2 Effet de la taille de l'inoculum et les conditions de culture
    
  • I-2 Sélection du substrat pour la production de Ji-glucosidase
    
  • I-3 Sélection de la source d'azote pour la production de Ji-glucosidase
    
  • I-4 Effet du rapport C/N sur la production de Ji-glucosidase
    
  • II- Résultats de la fermentation d'Aspergillus niger sur le milieu de culture optimisé
    
  • II-2 Caractérisation du jus de culture d'Aspergillus niger
    
  • II-2-1 Evaluation de protéines et de sucre réducteur dans le jus de fermentation
    
  • II-2-2 Evaluation des activités Ji-glucosidase et estérase dans le jus de fermentation
    
  • III- Caractérisation de la Ji-glucosidase d'A. niger
    
  • III-1 Détermination de pH optimum
    
  • III-2 Détermination de la température optimale
    
  • IV- Production de â-glucosidase en fermenteur
    
  • IV-1 Procédé de la microfiltration tangentielle pour la clarification de jus de fermentation
    
  • IV-2- Procédé de la concentration du filtrat
    
  • IV-3- Effet de l'hydrolyse du son de blé sur la fermentation
    
• Chapitre II:
  
  • I-1 Introduction
    
  • I-2 Hydrolyse enzymatique des margines par la culture d'A. niger
    
  • I-2-1 Effet du substrat sur la biotransformation en hydroxytytrosol
    
  • I-2-2 Identification au CLHP des produits obtenus
    
  • I-2-3 Identification au CG-SM des produits obtenus
    
  • I-3 Activité antioxydante
    
  • I-4 Conclusion
    
  • II-1 Introduction
    
  • II-2 Production d'enzymes
    
  • II-3 Hydrolyse enzymatique des composés phénoliques des margines
    
  • II-4 Effet antiradicalaire DPPH de l'extrait des margines
    
  • II-5 Conclusion
    
  • III-2 Effet de la température sur la réaction de bioconversion et sur l'activité â- glucosidase
    
  • III-3 Effet du pH sur la réaction de bioconversion et sur l'activité â- glucosidase
    
  • III-4 Effet du type de margine sur la libération de l'hydroxytyrosol
    
  • III-5 Relation entre la production de l'hydroxytyrosol et la concentration de Ji-glucosidase
    
  • III-6 Effet de l'agitation sur la réaction de bioconversion
    
  • III-7 Conclusion
    
  • IV-Essai d'immobilisation de la Ji-glucosidase sur l'alginate de calcium
    
  • IV-1 Introduction
    
  • IV-2 Effet de la concentration en alginate de calcium sur l'activité â-glucosidase
    
  • V- Caractérisation des propriétés de l'enzyme immobilisée
    
  • V-1 Introduction
    
  • V-2 Effet de la température et le pH sur l'enzyme immobilisé
    
  • VI- Evaluation de la bioconversion par l'enzyme libre et immobilisée
    
• Chapitre III:
  
  • II-1 Bioconversion de margine issue d'huilerie super press
    
  • II-2 Bioconversion de margine issue de huilerie chaine continue
    
  • III- Essai de bioconversion des margines à l'échelle pilote
    
  • II-1 Introduction
    
  • II-2 Bioconversion des margines issue de huilerie moderne chaine continue à l'échelle
    
  • II-3 Bioconversion des margines issue de huilerie classique super press à l'échelle pilote
    
  • IV-Essai de la bioconversion des composés phénoliques des margines à grande échelle
    
  • V- Etude de la stabilité de l'hydroxytyrosol produit
    
  • VI- Technologies de séparation de l'hydroxytyrosol par membrane
    
  • VII- Caractérisation physico-chimique de concentré ultime
    
  • VIII- Conclusion
    
• Conclusion et Perspectives
  
• CONCLUSION ET PERSPECTIVES
  
• Conclusion et Perspectives
  
• Conclusion et Perspectives
  
• Conclusion et Perspectives